BD
Bence Dániel
Author with expertise in Natural Killer Cells in Immunity
Achievements
Open Access Advocate
Cited Author
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
19
(79% Open Access)
Cited by:
680
h-index:
25
/
i10-index:
40
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
24

TCR-BERT: learning the grammar of T-cell receptors for flexible antigen-xbinding analyses

Kevin Wu et al.Nov 20, 2021
Abstract The T-cell receptor (TCR) allows T-cells to recognize and respond to antigens presented by infected and diseased cells. However, due to TCRs’ staggering diversity and the complex binding dynamics underlying TCR antigen recognition, it is challenging to predict which antigens a given TCR may bind to. Here, we present TCR-BERT, a deep learning model that applies self-supervised transfer learning to this problem. TCR-BERT leverages unlabeled TCR sequences to learn a general, versatile representation of TCR sequences, enabling numerous downstream applications. We demonstrate that TCR-BERT can be used to build state-of-the-art TCR-antigen binding predictors with improved generalizability compared to prior methods. TCR-BERT simultaneously facilitates clustering sequences likely to share antigen specificities. It also facilitates computational approaches to challenging, unsolved problems such as designing novel TCR sequences with engineered binding affinities. Importantly, TCR-BERT enables all these advances by focusing on residues with known biological significance. TCR-BERT can be a useful tool for T-cell scientists, enabling greater understanding and more diverse applications, and provides a conceptual framework for leveraging unlabeled data to improve machine learning on biological sequences.
24
Citation30
0
Save
1

Clonal hematopoiesis is driven by aberrant activation of TCL1A

Joshua Weinstock et al.Dec 13, 2021
Abstract A diverse set of driver genes, such as regulators of DNA methylation, RNA splicing, and chromatin remodeling, have been associated with pre-malignant clonal expansion of hematopoietic stem cells (HSCs). The factors mediating expansion of these mutant clones remain largely unknown, partially due to a paucity of large cohorts with longitudinal blood sampling. To circumvent this limitation, we developed and validated a method to infer clonal expansion rate from single timepoint data called PACER (passenger-approximated clonal expansion rate). Applying PACER to 5,071 persons with clonal hematopoiesis accurately recapitulated the known fitness effects due to different driver mutations. A genome-wide association study of PACER revealed that a common inherited polymorphism in the TCL1A promoter was associated with slower clonal expansion. Those carrying two copies of this protective allele had up to 80% reduced odds of having driver mutations in TET2, ASXL1, SF3B1, SRSF2 , and JAK2 , but not DNMT3A. TCL1A was not expressed in normal or DNMT3A -mutated HSCs, but the introduction of mutations in TET2 or ASXL1 by CRISPR editing led to aberrant expression of TCL1A and expansion of HSCs in vitro. These effects were abrogated in HSCs from donors carrying the protective TCL1A allele. Our results indicate that the fitness advantage of multiple common driver genes in clonal hematopoiesis is mediated through TCL1A activation. PACER is an approach that can be widely applied to uncover genetic and environmental determinants of pre-malignant clonal expansion in blood and other tissues.
1
Citation9
0
Save
0

Systematic decoding of cis gene regulation defines context-dependent control of the multi-gene costimulatory receptor locus in human T cells

Cody Mowery et al.May 29, 2024
Cis-regulatory elements (CREs) interact with trans regulators to orchestrate gene expression, but how transcriptional regulation is coordinated in multi-gene loci has not been experimentally defined. We sought to characterize the CREs controlling dynamic expression of the adjacent costimulatory genes CD28, CTLA4 and ICOS, encoding regulators of T cell-mediated immunity. Tiling CRISPR interference (CRISPRi) screens in primary human T cells, both conventional and regulatory subsets, uncovered gene-, cell subset- and stimulation-specific CREs. Integration with CRISPR knockout screens and assay for transposase-accessible chromatin with sequencing (ATAC-seq) profiling identified trans regulators influencing chromatin states at specific CRISPRi-responsive elements to control costimulatory gene expression. We then discovered a critical CCCTC-binding factor (CTCF) boundary that reinforces CRE interaction with CTLA4 while also preventing promiscuous activation of CD28. By systematically mapping CREs and associated trans regulators directly in primary human T cell subsets, this work overcomes longstanding experimental limitations to decode context-dependent gene regulatory programs in a complex, multi-gene locus critical to immune homeostasis.
0
Citation2
0
Save
Load More