Abstract Genome sequences from 47 monkeypox virus infections detected in a German university virology laboratory were analyzed in context of other sequences from the 2022 outbreak and earlier monkeypox genomes. Identical non-synonymous amino acid changes in six genes and the signature of APOBEC editing match other sequences from the European outbreak. Non-synonymous changes that were present in one to three sequences were found in 34 other genes. In sequences from two lesions of one patient, an 856 nucleotide translocation between genome termini resulted in the duplication of an initial 5’ gene, and the disruption or complete deletion of four genes near the 3’ genome end. Orthopoxvirus genome rearrangements of this nature are known to confer fitness advantages in the face of selection pressure. This change may therefore represent an early virus adaptation in the novel widespread and sustained human-to-human context of the current monkeypox outbreak.

Abstract SARS-CoV-2 has developed substantial antigenic variability. As the majority of the population now has pre-existing immunity due to infection or vaccination, the use of experimentally generated animal immune sera can be valuable for measuring antigenic differences between virus variants. Here, we immunized Syrian hamsters by two successive infections with one of eight SARS-CoV-2 variants. Their sera were titrated against 14 SARS-CoV-2 variants and the resulting titers visualized using antigenic cartography. The antigenic map shows a condensed cluster containing all pre-Omicron variants (D614G, Alpha, Delta, Beta, Mu, and an engineered B.1+E484K variant), and a considerably more distributed positioning among a selected panel of Omicron subvariants (BA.1, BA.2, BA.4/5, the BA.5 descendants BF.7 and BQ.1.18; the BA.2.75 descendant BN.1.3.1; and the BA.2-derived recombinant XBB.2). Some Omicron subvariants were as antigenically distinct from each other as the wildtype is from the Omicron BA.1 variant. The results highlight the potential of using variant-specifically infected hamster sera for the continued antigenic characterisation of SARS-CoV-2.