ABSTRACT E-cigarette and vaping device use continue to rise, particularly in adolescents and young adults, but the safety of inhaling the multitude of chemicals within e-cigarette aerosols has been questioned. While several studies have evaluated vaping effects on the lungs and heart; effects on the gastrointestinal tract remain unknown. Using established murine models of acute (1 week) and chronic (3 month) daily e-cigarette aerosol inhalation, both with nicotine-containing and vehicle control e-liquids, murine colon transcriptomics and organoid co-culture models, we assessed the effects of e-cigarette use on the gut barrier and mucosal health. Histologic analyses revealed that chronic exposure to nicotine-free e-cigarette aerosols induced mucosal inflammation. Transcriptome analyses revealed that chronic, but not acute, nicotine-free e-cigarette use significantly reduced expression of tight junction markers, including occluding, and drove expression of pro-inflammatory cytokines. Exposure of murine and human enteroid-derived monolayers (EDMs) to nicotine-free e-cigarette aerosols alone, or in co-culture with invasive E. coli, confirmed that repetitive exposure was sufficient to recapitulate the key findings observed in vivo , i.e., barrier-disruption, downregulation of occludin, inflammation, and an accentuated risk of and response to bacterial infection. These data highlight an unexpected harmful effect of e-cigarette use on the gut barrier and pinpoint non-nicotine chemical components common across >90% of e-cigarette e-liquids as the source of harm. Given the ever-expanding importance of the integrity of the gut barrier for host fitness, and impact of gut mucosal inflammation on a multitude of chronic diseases, these findings are broadly relevant to medicine and public health. SIGNIFICANCE The safety of electronic cigarettes has been questioned amidst emerging evidence that they may derail our immune system and increase our susceptibility to infections. Despite these insights, their impact on the most critical entity that separates trillions of microbes from the largest immune system in our body, i.e., the gut barrier, remains unexplored. Using a combination of mouse models, gut transcriptomics, and murine and human gut-derived organoids, here we show that chronic exposure to aerosols of electronic-cigarette disrupts the gut barrier, increases its susceptibility to bacterial infections and triggers inflammation. Given the importance of the gut barrier in the maintenance of immune homeostasis, these findings provide valuable insights into the potential long-term harmful effects of electronic cigarettes on health.

Crohn's disease (CD) is a complex, clinically heterogeneous disease of multifactorial origin; there is no perfect pre-clinical model, little insight into the basis for such heterogeneity, and still no cure. To address these unmet needs, we sought to explore the translational potential of adult stem cell-derived organoids that not only retain their tissue identity, but also their genetic and epigenetic disease-driving traits. We prospectively created a biobank of CD patient-derived organoid cultures (PDOs) using biopsied tissues from colons of 34 consecutive subjects representing all clinical subtypes (Montreal Classification B1-B3 and perianal disease). PDOs were generated also from healthy subjects. Comparative gene expression analyses enabled benchmarking of PDOs as tools for modeling the colonic epithelium in active disease and revealed that despite the clinical heterogeneity there are two major molecular subtypes: immune-deficient infectious-CD [IDICD] and stress and senescence-induced fibrostenotic-CD [S2FCD]. The transcriptome, genome and phenome show a surprising degree of internal consistency within each molecular subtype. The spectrum of morphometric, phenotypic, and functional changes within the "living biobank" reveals distinct differences between the molecular subtypes. These insights enabled drug screens that reversed subtype-specific phenotypes, e.g., impaired microbial clearance in IDICD was reversed using agonists for nuclear receptors, and senescence in S2FCD was rectified using senotherapeutics, but not

Abstract Background Host engulfment protein ELMO1 generates intestinal inflammation following internalization of enteric bacteria. In Shigella , bacterial effector IpgB1 interacts with ELMO1 and promotes bacterial invasion. IpgB1 belongs to the WxxxE effector family, a motif found in several effector of enteric pathogens. Here, we have studied the role of WxxxE effectors, with emphasis on Salmonella SifA and whether it interacts with ELMO1 to regulate inflammation. Methodology In-silico-analysis of WxxxE effectors was performed using BLAST search and Clustal W program. The interaction of ELMO1 with SifA was assessed by GST pulldown assay and co-immunoprecipitation. ELMO1 knock-out mice, and ELMO1-depleted murine macrophage J774 cell lines were challenged with WT and SifA mutant Salmonella . Bacterial effectors containing the WxxxE motif were transfected in WT and ELMO1-depleted J774 cells to assess the inflammatory cytokines. Results ELMO1 generates differential pro-inflammatory cytokines between pathogenic and non-pathogenic bacteria. WxxxE motif is present in pathogens and in the TIR domain of host proteins. The C-terminal part of ELMO1 interacts with SifA where WxxxE motif is important for interaction. ELMO1-SifA interaction affects the bacterial colonization, dissemination, and inflammatory cytokines in vivo . Moreover, ELMO1-SifA interaction increases TNF-α and IL-6 production from the macrophage cell line and is associated with enhanced Rac1 activity. ELMO1 also interacts with WxxxE effectors IpgB1, IpgB2, and Map, and induces inflammation after challenge with microbe or microbial ligand. Conclusion ELMO1 generates a differential response through interaction with the WxxxE motif which is absent in commensals. ELMO1-WxxxE interaction plays a role in bacterial pathogenesis and induction of inflammatory response. Highlights ELMO1 generates a differential immune response between enteric pathogens and commensals. Enteric bacterial effectors containing WxxxE signature motif interact with ELMO1. The WxxxE effector of Salmonella SifA interacts with the C-terminal part of ELMO1. ELMO1-SifA interaction increases the inflammatory response in vivo and in vitro .

SUMMARY Sensing of pathogens by Nucleotide oligomerization domain (NOD)-like 2 receptor (NOD2) induces a protective inflammatory response that coordinates bacterial clearance. Polymorphisms in NOD2 impair bacterial clearance, leading to chronic gut inflammation in Crohn’s disease (CD) via mechanisms that remain incompletely understood. We identify GIV/Girdin (CCDC88A) as a NOD2-interactor that shapes bacterial sensing-and-signaling in macrophages. Myeloid-specific GIV depletion exacerbated and protracted infectious colitis and abolished the protective effect of muramyl dipeptide (MDP) in both chemical colitis and severe sepsis. In the presence of GIV, macrophages enhance anti-bacterial pathways downstream of NOD2, clear microbes rapidly and concomitantly suppress inflammation. GIV’s actions are mediated via its C-terminus, which directly binds the terminal leucine-rich repeat (LRR#10) of NOD2; binding is augmented by MDP and ATP, precedes receptor oligomerization, and is abolished by the 1007fs CD-risk variant which lacks LRR#10. Findings illuminate mechanisms that underlie protective NOD2 signaling and loss of function in the major 1007fs variant. GRAPHIC ABSTRACT In brief This work reveals a mechanism by which macrophages use their innate immune sensor, NOD2, to protect the host against overzealous inflammation during bacterial infections, and the consequences of its loss, as occurs in the most important Crohn’s disease-risk variant. HIGHLIGHTS GIV is a functional and direct interactor of the terminal LRR repeat of NOD2 Mice lacking MФ GIV develop dysbiosis, protracted ileocolitis and sepsis MDP/NOD2-dependent protective host responses require GIV CD-risk NOD2 1007fs variant lacking the terminal LRR#10 cannot bind GIV

BACKGROUND & AIMS: Luminal dysbiosis is ubiquitous in inflammatory bowel disease (IBD), but how the microbes trigger pro-inflammatory cascades in the epithelial and phagocytic cells remains unknown. Here we investigated the role of the microbial sensor ELMO1 (Engulfment and Cell Motility Protein-1) in sensing and responding to IBD-associated microbes in the gut epithelium and in macrophages. METHODS: A stem cell-based technique is used to grow enteroids from WT and ELMO1-/- mice and from colonic biopsies of patients with IBD and subsequently differentiate them into enteroid-derived monolayers (EDMs) that mimic the gut epithelium/Gut in a dish. EDMs infected with IBD-associated invasive E. coli-LF82 were analyzed for bacterial internalization, cytokine production and monocyte-recruitment when co-cultured with monocytes. RESULTS: Expression of ELMO1 is elevated in the colonic epithelium and in the inflammatory infiltrates within the lamina propria in IBD, higher expression correlated with elevated expression of pro-inflammatory cytokines, MCP-1 and TNF-α. ELMO1-/- murine EDMs displayed a significant reduction of bacterial internalization through epithelial tight junctions and in MCP-1 production compared to WT mice. MCP-1 that is released from the epithelium recruited monocytes. Once recruited, macrophages required ELMO1 to engulf the bacteria and propagate a robust pro-inflammatory cytokine storm (TNF-α). CONCLUSIONS: ELMO1 couples microbial-sensing to inflammation in both phagocytic and non-phagocytic host cells; it is required for the production of MCP-1 in the epithelium and TNF-α in macrophages. Findings raise the possibility that upregulation of epithelial ELMO1 and the epithelial ELMO1→MCP-1 axis may serve as an early biomarker and therapeutic target, respectively, in IBD and other disorders of inflammation.

Macrophages clear infections by engulfing and digesting pathogens within phagolysosomes. Pathogens escape this fate by engaging in a molecular arms race; they use WxxxE motif-containing effector proteins to subvert the host cells they invade and seek refuge within protective vacuoles. Here we define the host component of the molecular arms race as an evolutionarily conserved polar hotspot on the PH-domain of ELMO1 (Engulfment and Cell Motility1), which is targeted by diverse WxxxE-effectors. Using homology modeling and site-directed mutagenesis, we show that a lysine triad within the patch directly binds all WxxxE-effectors tested: SifA (Salmonella), IpgB1 and IpgB2 (Shigella), and Map (enteropathogenic E. coli). Using an integrated SifA-host protein-protein interaction (PPI) network, in-silico network perturbation, and functional studies we show that the major consequences of preventing SifA-ELMO1 interaction are reduced Rac1 activity and microbial invasion. That multiple effectors of diverse structure, function, and sequence bind the same hotpot on ELMO1 suggests that the WxxxE-effector(s)-ELMO1 interface is a convergence point of intrusion detection and/or host vulnerability. We conclude that the interface may represent the fault line in co-evolved molecular adaptations between pathogens and the host and its disruption may serve as a therapeutic strategy.

SARS-CoV-2, the virus responsible for COVID-19, causes widespread damage in the lungs in the setting of an overzealous immune response whose origin remains unclear. We present a scalable, propagable, personalized, cost-effective adult stem cell-derived human lung organoid model that is complete with both proximal and distal airway epithelia. Monolayers derived from adult lung organoids (ALOs), primary airway cells, or hiPSC-derived alveolar type-II (AT2) pneumocytes were infected with SARS-CoV-2 to create in vitro lung models of COVID-19. Infected ALO-monolayers best recapitulated the transcriptomic signatures in diverse cohorts of COVID-19 patient-derived respiratory samples. The airway (proximal) cells were critical for sustained viral infection whereas distal alveolar differentiation (AT2→AT1) was critical for mounting the overzealous host immune response in fatal disease; ALO monolayers with well-mixed proximodistal airway components recapitulated both. Findings validate a human lung model of COVID-19 which can be immediately utilized to investigate COVID-19 pathogenesis, and vet new therapies and vaccines.

The host EnguLfment and cell MOtility protein 1 (ELMO1) is a cytosolic microbial sensor that facilitates bacterial sensing, internalization, clearance, and inflammatory responses. We have shown previously that ELMO1 binds bacterial effector proteins, including pathogenic effectors from