Abstract To investigate the duration of humoral immune response in convalescent coronavirus disease 2019 (COVID-19) patients, we conduct a 12-month longitudinal study through collecting a total of 1,782 plasma samples from 869 convalescent plasma donors in Wuhan, China and test specific antibody responses. The results show that positive rate of IgG antibody against receptor-binding domain of spike protein (RBD-IgG) to severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) in the COVID-19 convalescent plasma donors exceeded 70% for 12 months post diagnosis. The level of RBD-IgG decreases with time, with the titer stabilizing at 64.3% of the initial level by the 9th month. Moreover, male plasma donors produce more RBD-IgG than female, and age of the patients positively correlates with the RBD-IgG titer. A strong positive correlation between RBD-IgG and neutralizing antibody titers is also identified. These results facilitate our understanding of SARS-CoV-2-induced immune memory to promote vaccine and therapy development.

Abstract Severe acute respiratory syndrome coronavirus-2 (SARS-CoV-2), which causes coronavirus disease-2019 (COVID-19), interacts with the host cell receptor angiotensin-converting enzyme 2 (hACE2) via its spike 1 protein for infection. After the virus sequence was published, we identified two potent antibodies against SARS-CoV-2 RBD from antibody libraries using a phage-to-yeast (PtY) display platform in only 10 days. Our lead antibody JMB2002, now in a phase I clinical trial, showed broad-spectrum in vitro blocking activity against hACE2 binding to the RBD of multiple SARS-CoV-2 variants including B.1.351 that was reportedly much more resistant to neutralization by convalescent plasma, vaccine sera and some clinical stage neutralizing antibodies. Furthermore, JMB2002 has demonstrated complete prophylactic and potent therapeutic efficacy in a rhesus macaque disease model. Prophylactic and therapeutic countermeasure intervention of SARS-CoV-2 using JMB2002 would likely slow down the transmission of currently emerged SARS-CoV-2 variants and result in more efficient control of the COVID-19 pandemic.

Abstract The ongoing coronavirus COVID-19 pandemic is caused by a new coronavirus (SARS-CoV-2) with its origin in the city of Wuhan in China. From there it has been rapidly spreading to many cities inside and outside China. Nowadays more than 33 millions with deaths surpassing 1 million have been recorded worldwide thus representing a major health issue. Rapid development of a protective vaccine against COVID-19 is therefore of paramount importance. Here we demonstrated that recombinantly expressed receptor binding domain (RBD) of the spike protein homologous to SARS binds to ACE2, the viral receptor. Higly repetitive display of RBD on immunologically optimized virus-like particles derived from cucumber mosaic virus (CuMV TT ) resulted in a vaccine candidate that induced high levels of specific antibodies in mice which were able to block binding of spike protein to ACE2 and potently neutralized COVID-19 virus in vitro .

Abstract Caspase-8, a pivotal protease intricately involved in various cellular signaling pathways related to cell death and inflammation, has been identified as a contributor to cytokine production during septic shock. However, the mechanisms governing this regulatory role remain enigmatic. In this study, we uncovered that mice harboring a specific mutation in CYLD at its D215 position ( Cyld D 215 A/D 215 A mutant mice), rendering CYLD resistant to caspase8 cleavage, exhibited marked protection against lethal endotoxic shock. Moreover, the removal of Cyld in Caspase8 -/- Mlkl -/- mice restored their sensitivity to endotoxic shock, indicating Caspase8 promotes LPS-induced endotoxic shock by cleaving its substrate CYLD and maintaining CYLD stability confers resistance to endotoxic shock. Mechanistically, CYLD was found to catalyze the removal of LUBAC-mediated M1-linked ubiquitination of NF-kB p65 at K301/K303, thereby suppressing the nuclear translocation and activation of p65 for subsequent cytokines production. Notably, the cleaved N-terminal fragment of CYLD (named CP25) is secreted in a TRIF/Caspase8-dependent manner. Moreover, CP25 can be detected in the serum of septic mice, and its levels show a strong correlation with corresponding serum IL-1β, suggesting its potential utility as an inflammatory biomarker. Overall, these findings highlight the significance of CYLD cleavage as a promising therapeutic target and diagnostic marker for endotoxic shock.