Integrative in-cell structural biology In bacteria, RNA polymerases can associate with ribosomes to form transcription-translation units called expressomes. Multiple models based on structural data of in vitro reconstitution assays have been proposed for how the two machineries interface with one another. Understanding this bacteria-specific coupling mechanism offers insight regarding the central dogma of molecular biology and might be leveraged for antibiotic development. O'Reilly et al. found that the NusA protein interfaces between the two complexes. The authors combined cryo–electron tomography and cross-linking mass spectrometry to produce an integrative model of the transcribing, translating expressome of Mycoplasma pneumoniae obtained entirely from in-cell data. This approach contributes to the development of in-cell structural biology. Science , this issue p. 554

Abstract Structural biology performed inside cells can capture molecular machines in action within their native context. Here we develop an integrative in-cell structural approach using the genome-reduced human pathogen Mycoplasma pneumoniae . We combine whole-cell crosslinking mass spectrometry, cellular cryo-electron tomography, and integrative modeling to determine an in-cell architecture of a transcribing and translating expressome at sub-nanometer resolution. The expressome comprises RNA polymerase (RNAP), the ribosome, and the transcription elongation factors NusG and NusA. We pinpoint NusA at the interface between a NusG-bound elongating RNAP and the ribosome, and propose it could mediate transcription-translation coupling. Translation inhibition dissociates the expressome, whereas transcription inhibition stalls and rearranges it, demonstrating that the active expressome architecture requires both translation and transcription elongation within the cell.

Abstract In the early stages of SARS-CoV-2 infection, non-structural protein 1 (Nsp1) inhibits the innate immune response by inserting its C-terminal helices into the mRNA entry channel of the ribosome and promoting mRNA degradation. Nevertheless, the mechanism by which Nsp1 achieves host translational shutoff while allowing for viral protein synthesis remains elusive. We set out to characterize the interactome of full-length Nsp1 and its topology by crosslinking mass spectrometry in order to investigate the role of the N-terminal domain and linker regions in host translational shutoff. We find that these regions are in contact with 40S proteins lining the mRNA entry channel and detect a novel interaction with the G subunit of the eIF3 complex. The crosslink-derived distance restraints allowed us to derive an integrative model of full-length Nsp1 on the 40S subunit, reporting on the dynamic interface between Nsp1, the ribosome and the eIF3 complex. The significance of the Nsp1-eIF3G interaction is supported by further evidence that Nsp1 predominantly binds to 40-43S complexes. Our results point towards a mechanism by which Nsp1 is preferentially recruited to canonical initiation complexes, leading to subsequent mRNA degradation.

Summary Accurately modeling the structures of proteins and their complexes using artificial intelligence is revolutionizing molecular biology. Experimental data enables a candidate-based approach to systematically model novel protein assemblies. Here, we use a combination of in-cell crosslinking mass spectrometry, cofractionation mass spectrometry (CoFrac-MS) to identify protein-protein interactions in the model Gram-positive bacterium Bacillus subtilis . We show that crosslinking interactions prior to cell lysis reveals protein interactions that are often lost upon cell lysis. We predict the structures of these protein interactions and others in the Subti Wiki database with AlphaFold-Multimer and, after controlling for the false-positive rate of the predictions, we propose novel structural models of 153 dimeric and 14 trimeric protein assemblies. Crosslinking MS data independently validates the AlphaFold predictions and scoring. We report and validate novel interactors of central cellular machineries that include the ribosome, RNA polymerase and pyruvate dehydrogenase, assigning function to several uncharacterized proteins. Our approach uncovers protein-protein interactions inside intact cells, provides structural insight into their interaction interface, and is applicable to genetically intractable organisms, including pathogenic bacteria.

ABSTRACT Protein synthesis begins with the formation of a ribosome-mRNA complex. In bacteria, the 30S ribosomal subunit is recruited to many mRNAs through base pairing with the Shine Dalgarno (SD) sequence and RNA binding by ribosomal protein bS1. Translation can initiate on nascent mRNAs and RNA polymerase (RNAP) can promote recruitment of the pioneering 30S subunit. Here we examined ribosome recruitment to nascent mRNAs using cryo-EM, single-molecule fluorescence co-localization, and in-cell crosslinking mass spectrometry. We show that bS1 delivers the mRNA to the ribosome for SD duplex formation and 30S subunit activation. Additionally, bS1 mediates the stimulation of translation initiation by RNAP. Together, our work provides a mechanistic framework for how the SD duplex, ribosomal proteins and RNAP cooperate in 30S recruitment to mRNAs and establish transcription-translation coupling.

Sphingolipids are important structural components of membranes. Additionally, simple sphingolipids such as sphingosine are highly bioactive and participate in complex subcellular signaling. Sphingolipid deregulation is associated with many severe diseases including diabetes, Parkinson9s and cancer. Here, we focus on how sphingosine, generated from sphingolipid catabolism in late endosomes/lysosomes, is reintegrated into the biosynthetic machinery at the endoplasmic reticulum (ER). We characterized the sterol transporter STARD3 as a sphingosine transporter acting at lysosome-ER contact sites. Experiments featuring crosslinkable sphingosine probes, supported by unbiased molecular dynamics simulations, exposed how sphingosine binds to the lipid-binding domain of STARD3. Following the metabolic fate of pre-localized lysosomal sphingosine showed the importance of STARD3 and its actions at contact sites for the integration of sphingosine into ceramide in a cellular context. Our findings provide the first example of inter-organellar sphingosine transfer and pave the way for a better understanding of sphingolipid - sterol co-regulation.

ABSTRACT Condensin complexes promote the drastic spatial rearrangement of the genome upon mitotic entry. Condensin II initiates chromosome condensation in early mitosis. To prevent chromosome condensation during interphase, condensin II is inhibited by MCPH1, but the mechanism is unknown. Through genetic and proteomic approaches, we identify M18BP1, a protein previously associated with centromere identity, as a factor required for condensin II localization to chromatin. M18BP1 directly binds condensin II’s CAP-G2 subunit and competes with MCPH1 for binding. Upon mitotic entry, CDK1 mediated phosphorylation may promote a switch from MCPH1 to M18BP1 binding to activate condensin II. Our results identify a fundamental and evolutionarily conserved mechanism of condensin II activation.

Abstract Human cytomegalovirus (CMV) is a highly relevant and ubiquitously distributed human pathogen. Its rodent counterparts such as mouse and rat CMV serve as common infection models. Here, we conducted the first global proteome profiling of rat CMV-infected cells and uncovered a pronounced loss of the transcription factor STAT2, which is crucial for interferon signalling. Deletion mutagenesis documented that STAT2 is targeted by the viral protein E27. Cellular and in vitro analyses showed that E27 exploits host-derived Cullin4-RING ubiquitin ligases (CRL4) to induce poly-ubiquitylation and proteasomal degradation of STAT2. A cryo-electron microscopic structure determination revealed how E27 mimics molecular surface properties of cellular CRL4 substrate receptors called DDB1- and Cullin4-associated factors (DCAFs) to displace them from the catalytic core of CRL4. Moreover, structural analyses elucidated the mechanism of STAT2 recruitment and indicate that E27-binding additionally disturbs STAT2-dependent interferon signalling by occupying its IRF9 binding interface. For the first time, these data provide structural insights into cytomegalovirus-encoded interferon antagonism and establish an atomic model for STAT2 counteraction by CRL4 misappropriation with important implications for viral immune evasion.

ATP fuels crucial cellular processes and is obtained mostly by oxidative phosphorylation (OXPHOS) at the inner mitochondrial membrane. While significant progress has been made in mechanistic understanding of ATP production, critical aspects surrounding its substrate supply logistics are poorly understood. We identify an interaction between mitochondrial apoptosis-inducing factor 1 (AIFM1) and adenylate kinase 2 (AK2) as gatekeeper of ATP synthase. This interaction is NADH-dependent and influenced by glycolysis, linking it to the cell's metabolic state. Genetic interference with AIFM1/AK2 association impedes the ability of Caenorhabditis elegans animals to handle altered metabolic rates and nutrient availability. Together, the results imply AIFM1 as a cellular NADH sensor, placing AK2 next to the OXPHOS complexes for local ADP regeneration as the substrate for ATP synthesis. This metabolic signal relay balances ATP synthase substrate supply against ATP conservation, enabling cells to adapt to fluctuating energy availability, with possible implications for AIFM1-related mitochondrial diseases.

Abstract Viruses have evolved means to manipulate the host’s ubiquitin-proteasome system, in order to down-regulate antiviral host factors. The Vpx/Vpr family of lentiviral accessory proteins usurp the substrate receptor DCAF1 of host Cullin4-RING ligases (CRL4), a family of modular ubiquitin ligases involved in DNA replication, DNA repair and cell cycle regulation. CRL4 DCAF1 specificity modulation by Vpx and Vpr from certain simian immunodeficiency viruses (SIV) leads to recruitment, poly-ubiquitylation and subsequent proteasomal degradation of the host restriction factor SAMHD1, resulting in enhanced virus replication in differentiated cells. To unravel the mechanism of SIV Vpr-induced SAMHD1 ubiquitylation, we conducted integrative biochemical and structural analyses of the Vpr protein from SIVs infecting Cercopithecus cephus (SIV mus ). X-ray crystallography reveals commonalities between SIV mus Vpr and other members of the Vpx/Vpr family with regard to DCAF1 interaction, while cryo-electron microscopy and cross-linking mass spectrometry highlight a divergent molecular mechanism of SAMHD1 recruitment. In addition, these studies demonstrate how SIV mus Vpr exploits the dynamic architecture of the multi-subunit CRL4 DCAF1 assembly to optimise SAMHD1 ubiquitylation. Together, the present work provides detailed molecular insight into variability and species-specificity of the evolutionary arms race between host SAMHD1 restriction and lentiviral counteraction through Vpx/Vpr proteins. Author summary Due to the limited size of virus genomes, virus replication critically relies on host cell components. In addition to the host cell’s energy metabolism and its DNA replication and protein synthesis apparatus, the protein degradation machinery is an attractive target for viral re-appropriation. Certain viral factors divert the specificity of host ubiquitin ligases to antiviral host factors, in order to mark them for destruction by the proteasome, to lift intracellular barriers to virus replication. Here, we present molecular details of how the simian immunodeficiency virus accessory protein Vpr interacts with a substrate receptor of host Cullin4-RING ubiquitin ligases, and how this interaction redirects the specificity of Cullin4-RING to the antiviral host factor SAMHD1. The studies uncover the mechanism of Vpr-induced SAMHD1 recruitment and subsequent ubiquitylation. Moreover, by comparison to related accessory proteins from other immunodeficiency virus species, we illustrate the surprising variability in the molecular strategies of SAMHD1 counteraction, which these viruses adopted during evolutionary adaptation to their hosts. Lastly, our work also provides deeper insight into the inner workings of the host’s Cullin4-RING ubiquitylation machinery.