Although studies have shown that urban environments and mass-transit systems have distinct genetic profiles, there are no systematic worldwide studies of these dense, human microbial ecosystems. To address this gap in knowledge, we created a global metagenomic and antimicrobial resistance (AMR) atlas of urban mass transit systems from 60 cities, spanning 4,728 samples and 4,424 taxonomically-defined microorganisms collected for three years. This atlas provides an annotated, geospatial profile of microbial strains, functional characteristics, antimicrobial resistance markers, and novel genetic elements, including 10,928 novel predicted viral species, 1302 novel bacteria, and 2 novel archaea. Urban microbiomes often resemble human commensal microbiomes from the skin and airways, but also contain a consistent "core" of 31 species which are predominantly not human commensal species. Samples show distinct microbial signatures which may be used to accurately predict properties of their city of origin including population, proximity to the coast, and taxonomic profile. These data also show that AMR density across cities varies by several orders of magnitude, including many AMRs present on plasmids with cosmopolitan distributions. Together, these results constitute a high-resolution, global metagenomic atlas, which enables the discovery of new genetic components of the built human environment, highlights potential forensic applications, and provides an essential first draft of the global AMR burden of the world's cities.### Competing Interest StatementThe authors have declared no competing interest.

Microbial community analysis can be biased by multiple technical factors, such as storage conditions, DNA extraction, or amplification conditions. In a high-throughput laboratory that relies on samples obtained from thousands of different subjects, knowledge of the extent of subject-introduced sampling and storage variation on the outcome of the inferred microbiome, as well as the effect of laboratory-introduced variation caused by reagent batches, equipment, or operator on the consistency of these processes within the laboratory is paramount. Here, we analyzed the effect of sampling from different parts of the same stool specimen or on different consecutive days, as well as short-term storage of samples at different temperatures on microbiome profiles obtained by 16S rRNA gene amplification. Each of these factors had relatively little effect on the microbial composition. In addition, replicate amplification of 44 stool samples showed reproducible results. Finally, 363 independent replicate extractions and amplifications of a single human homogenized stool (HS) specimen showed reproducible results (average Lin's correlation = 0.95), with little variation introduced by HS batch, operator, extraction equipment, or DNA sequencer. In all cases, variations between replicates were significantly smaller than those between individual samples; subject identity always was the largest determinant. We propose that homogenized stool specimens could be used as quality control to routinely monitor the laboratory process and to validate new methods.