Abstract RNA-guided surveillance systems constrain the activity of transposable elements (TEs) in host genomes. In plants, RNA polymerase IV (Pol IV) transcribes TEs into primary transcripts from which RDR2 synthesizes double-stranded RNA precursors for small interfering RNAs (siRNAs) that guide TE methylation and silencing. How the core subunits of Pol IV, homologs of RNA polymerase II subunits, diverged to support siRNA biogenesis in a TE-rich, repressive chromatin context is not well understood. Here we studied the N-terminus of Pol IV’s largest subunit, NRPD1. Arabidopsis lines harboring missense mutations in this N-terminus produce wild-type (WT) levels of NRPD1, which co-purifies with other Pol IV subunits and RDR2. Our in vitro transcription and genomic analyses reveal that the NRPD1 N-terminus is critical for robust Pol IV-dependent transcription, siRNA production and DNA methylation. However, residual RNA-directed DNA methylation observed in one mutant genotype indicates that Pol IV can operate uncoupled from the high siRNA levels typically observed in WT plants. This mutation disrupts a motif uniquely conserved in Pol IV, crippling the enzyme's ability to inhibit retrotransposon mobilization. We propose that the NRPD1 N-terminus motif evolved to regulate Pol IV function in genome surveillance.

Abstract Eukaryotic genomes contain a vast diversity of transposable elements (TEs). Formerly often described as selfish and parasitic DNA sequences, TEs are now recognized as a source of genetic diversity and powerful drivers of evolution. Yet, because their mobility is tightly controlled by the host, studies experimentally assessing how fast TEs may mediate the emergence of adaptive traits are scare. Here, we show that the heat-induced transposition of a low-copy TE increases phenotypic diversity and leads to the emergence of drought-tolerant individuals in Arabidopsis thaliana . We exposed high-copy TE lines (hcLines) with up to ∼8 fold increased copy numbers of the heat-responsive ONSEN TE ( AtCOPIA78 ) to drought as a straightforward and ecologically highly relevant selection pressure. We provide evidence for increased drought tolerance in five out of the 23 tested hcLines and further pinpoint one of the causative mutations to an exonic insertion of ONSEN in the ribose-5-phosphate-isomerase 2 gene. The resulting loss-of-function mutation caused a decreased rate of photosynthesis and water consumption. This is one of the rare empirical examples substantiating the adaptive potential of mobilized stress-responsive TEs in eukaryotes. Our work sheds light on the relationship between TEs and their hosts and demonstrates the importance of TE-mediated loss-of-function mutations in stress adaptation, particularly in the face of global warming.

Abstract Synchronizing the timing of reproduction with the environment is crucial in the wild. Among the multiple mechanisms annual plants evolved to sense their environment, the requirement of cold-mediated vernalization is a major process that prevents individuals from flowering during winter. In many annual plants including crops, both a long and short vernalization requirement can be observed within species, resulting in so-called early-(spring) and late (winter)-flowering genotypes. Here, using the grass model Brachypodium distachyon , we explored the link between flowering time-related trait (vernalization requirement and flowering time), environmental variation, and diversity at flowering-time genes by combining measurements under greenhouse and outdoor conditions. These experiments confirmed that B. distachyon natural accessions display large differences regarding vernalization requirements and ultimately flowering time. We underline significant, albeit quantitative effects of current environmental conditions on flowering time-related traits. While disentangling the confounding effects of population structure on flowering time-related traits remains challenging, population genomics analyses indicate that well-characterized flowering-time genes may contribute significantly to flowering time variation and display signs of polygenic selection. Flowering-time genes, however, do not colocalize with GWAs peaks obtained with outdoor measurements, suggesting that additional genetic factors contribute to flowering time variation in the wild. Altogether, our study fosters our understanding of the polygenic architecture of flowering time in a natural grass system and opens new avenues of research to investigate the gene-by-environment interaction at play for this trait. Article Summary Synchronizing the timing of reproduction with the environment is crucial in the wild. We used here the model Brachypodium distachyon to expand our knowledge on the adaptive potential and polygenic architecture of flowering time in wild grasses. While genetic factors play an important role in flowering time variation in our species, we showed that flowering time correlates with environmental variables and is therefore a locally adapted trait.

Abstract An accumulating body of evidence indicates that natural plant populations harbour a large diversity of transposable elements (TEs). TEs provide genetic and epigenetic variation that can substantially translate into changes in plant phenotypes. Despite the wealth of data on the ecological and evolutionary effects of TEs on plant individuals, we have virtually no information on the role of TEs on populations and ecosystem functioning. On the example of Arabidopsis thaliana , we demonstrate that TE-generated variation creates differentiation in ecologically important functional traits. In particular, we show that Arabidopsis populations with increasing diversity of individuals differing in copy numbers of the ONSEN retrotransposon had higher phenotypic and functional diversity. Moreover, increased diversity enhanced population productivity and reduced performance of interspecific competitors. We conclude that TE-generated diversity can have similar effects on ecosystem as usually documented for other biological diversity effects.

Long terminal repeat retrotransposons (LTR-RTs) are powerful mutagens regarded as a major source of genetic novelty and important drivers of evolution. Yet, the uncontrolled and potentially selfish proliferation of LTR-RTs can lead to deleterious mutations and genome instability, with large fitness costs for their host. While population genomics data suggest that an ongoing LTR-RT mobility is common in many species, the understanding of their dual roles in evolution is limited. Here, we harness the genetic diversity of 320 sequenced natural accessions of the Mediterranean grass Brachypodium distachyon to characterize how genetic and environmental factors influence plant LTR-RT dynamics in the wild. When combining a coverage-based approach to estimate global LTR-RT copy number variations with mobilome-sequencing of nine accessions exposed to eight different stresses, we find little evidence for a major role of environmental factors in LTR-RT accumulations in B. distachyon natural accessions. Instead, we show that loss of RNA polymerase IV (Pol IV), which mediates RNA-directed DNA methylation in plants, results in high transcriptional and transposition activities of RLC_BdisC024 (HOPPLA) LTR-RT family elements, and that these effects are not stress-specific. This work supports findings indicating an ongoing mobility in B. distachyon and reveals that host RNA-directed DNA methylation rather than environmental factors controls their mobility in this wild grass model.

Abstract Transposable elements (TEs) are major components of plant genomes, profoundly impacting the fitness of their hosts. However, technical bottlenecks have long hindered our mechanistic understanding of TEs. Using RNA-Seq and long-read sequencing with Oxford Nanopore Technologies’ direct cDNA sequencing, we analyzed the heat-induced transcription of TEs in three natural accessions of Arabidopsis thaliana (Cvi-0, Col-0, and Ler-1). In addition to the well- studied ONSEN retrotransposon family, we identified Copia-35 as a second heat-responsive retrotransposon family with particularly high activity in the relict accession Cvi-0. Our analysis revealed distinct expression patterns of individual TE copies and suggest different mechanisms regulating the GAG protein production in the ONSEN versus Copia-35 families. In addition, analogously to ONSEN , Copia-35 activation led to the upregulation of flanking genes such as AMUP9 and potentially to the quantitative modulation of flowering time. Unexpectedly, our results indicate that for both families, the upregulation of flanking genes is not directly initiated by transcription from their 3’ LTRs. These findings highlight the inter- and intraspecific expressional diversity linked to retrotransposon activation under stress, providing insights into their potential roles in plant adaptation and evolution at elevated temperatures.

Closely related to economically important crops, the grass Brachypodium distachyon has been originally established as a pivotal species for grass genomics but more recently flourished as a model for developmental biology. Grasses encompass more than 10,000 species and cover more than 40% of the world land area from tropical to temperate regions. Unlocking the sources of phenotypic variation in B. distachyon is hence of prime interest in fundamental and applied research in agronomy, ecology and evolution. We present here the B. distachyon diversity panel, which encompasses 332 fully sequenced accessions covering the whole species distribution from Spain to Iraq. By combining population genetics, niche modeling and landscape genomics, we suggest that B. distachyon recolonized Europe and the Middle East following the last glacial maximum. Consequently, the species faced new environmental conditions which led to clear associations between bioclimatic variables and genetic factors as well as footprints of positive selection in the genome. Altogether, this genomic resource offers a powerful alternative to Arabidopsis thaliana to investigate the genetic bases of adaptation and phenotypic plasticity in plants and more specifically in monocots.