Abstract Severe acute respiratory syndrome coronavirus-2 (SARS-CoV-2) infects wildlife. Recent studies highlighted that variants of concern (VOC) may expand into novel animal reservoirs with the potential for reverse zoonosis. North American white-tailed deer are the only deer species in which SARS-CoV-2 has been documented, raising the question whether further reservoir species exist as new VOC emerge. Here, we report the first cases of deer SARS-CoV-2 seropositivity in Eurasia, in a city population of fallow deer in Dublin, Ireland. Deer were seronegative in 2020 (circulating variant in humans: Alpha), one animal was seropositive in 2021 (Delta variant), and 57% of animals tested in 2022 were seropositive (Omicron variant). Ex vivo, a clinical isolate of Omicron BA.1 infected fallow deer precision cut lung slice type-2 pneumocytes, also a major target of infection in human lungs. Our findings suggest a change in host tropism as new variants emerged in the human reservoir, highlighting the importance of continued wildlife disease monitoring and limiting human-wildlife contacts. Teaser: This study is the first report of SARS-CoV-2 seropositivity in fallow deer, highlighting expansion of viral variants into new host reservoirs.

SARS-CoV-2, the coronavirus responsible for the COVID-19 pandemic, is associated with a range of neurological manifestations including haemorrhage, thrombosis and ischaemic necrosis and encephalitits. However, the mechanism by which this occurs is unclear. Neurological disease associated with SARS-CoV-2 infection has been proposed to occur following direct infection of the central nervous system and/or indirect sequelae as a result of peripheral inflammation. We profiled ACE2 and TMPRSS2 in brain tissue from five healthy human donors, and observed expression of these proteins in astrocytes, neurons and choroid plexus epithelium within frontal cortex and medulla. Primary human astrocytes, neurons and choroid plexus epithelial cells supported productive SARS-CoV-2 infection in an ACE2-dependent manner. Infected cells supported the full viral lifecycle, releasing infectious virus particles. In contrast, primary brain microvascular endothelial cells, pericytes and microglia were refractory to SARS-CoV-2 infection. These data support a model whereby SARS-CoV-2 is neurotropic, and this may in part explain the neurological sequelae of infection.

Some free fatty acids derived from milk and vegetable oils are known to have potent antiviral and antibacterial properties. However, therapeutic applications of short to medium chain fatty acids are limited by physical characteristics such as immiscibility in aqueous solutions. We evaluated a novel proprietary formulation based on an emulsion of short chain caprylic acid, ViroSAL, for its ability to inhibit a range of viral infections in vitro and in vivo. In vitro, ViroSAL inhibited the enveloped viruses Epstein-Barr, measles, herpes simplex, Zika and orf parapoxvirus, together with Ebola, Lassa, vesicular stomatitis and SARS-CoV-1 pseudoviruses, in a concentration- and time-dependent manner. Evaluation of the components of ViroSAL revealed that caprylic acid was the main antiviral component; however, the ViroSAL formulation significantly inhibited viral entry compared with caprylic acid alone. In vivo, VIROSAL significantly inhibited Zika and Semliki Forest Virus replication in mice following the inoculation of these viruses into mosquito bite sites. In agreement with studies investigating other free fatty acids, ViroSAL had no effect on norovirus, a non-enveloped virus, indicating that its mechanism of action may be via surfactant disruption of the viral envelope. We have identified a novel antiviral formulation that may have applications for prevention and/or treatment of a broad range of enveloped viruses.

Abstract A novel proprietary formulation, ViruSAL, has previously been demonstrated to inhibit diverse enveloped viral infections in vitro and in vivo . We evaluated the ability of ViruSAL to inhibit SARS-CoV-2 infectivity, using physiologically relevant models of the human bronchial epithelium, to model early infection of the upper respiratory tract. ViruSAL potently inhibited SARS-CoV-2 infection of human bronchial epithelial cells cultured as an air-liquid interface (ALI) model, in a concentration- and time-dependent manner. Viral infection was completely inhibited when ViruSAL was added to bronchial airway models prior to infection. Importantly, ViruSAL also inhibited viral infection when added to ALI models post-infection. No evidence of in vitro cellular toxicity was detected in ViruSAL treated cells at concentrations that completely abrogated viral infectivity. Moreover, intranasal instillation of ViruSAL to a rat model did not result in any toxicity or pathological changes. Together these findings highlight the potential for ViruSAL as a novel and potent antiviral for use within clinical and prophylactic settings.