The Amsterdam Declaration on Fungal Nomenclature was agreed at an international symposium convened in Amsterdam on 19-20 April 2011 under the auspices of the International Commission on the Taxonomy of Fungi (ICTF). The purpose of the symposium was to address the issue of whether or how the current system of naming pleomorphic fungi should be maintained or changed now that molecular data are routinely available. The issue is urgent as mycologists currently follow different practices, and no consensus was achieved by a Special Committee appointed in 2005 by the International Botanical Congress to advise on the problem. The Declaration recognizes the need for an orderly transitition to a single-name nomenclatural system for all fungi, and to provide mechanisms to protect names that otherwise then become endangered. That is, meaning that priority should be given to the first described name, except where that is a younger name in general use when the first author to select a name of a pleomorphic monophyletic genus is to be followed, and suggests controversial cases are referred to a body, such as the ICTF, which will report to the Committee for Fungi. If appropriate, the ICTF could be mandated to promote the implementation of the Declaration. In addition, but not forming part of the Declaration, are reports of discussions held during the symposium on the governance of the nomenclature of fungi, and the naming of fungi known only from an environmental nucleic acid sequence in particular. Possible amendments to the Draft BioCode (2011) to allow for the needs of mycologists are suggested for further consideration, and a possible example of how a fungus only known from the environment might be described is presented.

ABSTRACT For long-read sequencing applications, shearing of DNA is a significant issue as it limits the read-lengths generated by sequencing. During extraction and storage of DNA the DNA polymers are susceptible to physical and chemical shearing. In particular, the mechanisms of physical shearing are poorly understood in most laboratories as they are of little relevance to commonly used short-read sequencing technologies. This study draws upon lessons learned in a diverse set of research fields to create a comprehensive theoretical framework for obtaining high molecular weight DNA (HMW-DNA) to support improved quality management in laboratories and biobanks for long-read sequencing applications. Under common laboratory conditions physical and chemical shearing yields DNA fragments of 5-35 kilobases (kb) in length. This fragment length is sufficient for DNA sequencing using short-read technologies but for Nanopore sequencing, linked reads and single molecular real time sequencing (SMRT) poorly preserved DNA will limit the length of the reads generated. The shearing process can be divided into physical and chemical shearing which generates different patterns of fragmentation. Exposure to physical shearing creates a characteristic fragment length where the main cause of shearing is shear stress induced by turbulence. The characteristic fragment length is several thousand base pairs longer than the reads produced by short-read sequencing as the shear stress imposed on short DNA fragments is insufficient to shear the DNA. This characteristic length can be measured using gel electrophoresis or instruments for DNA fragment analysis,. Chemical shearing generates randomly distributed fragment lengths visible as a smear of DNA below the peak fragment length. By measuring the peak of the DNA fragment length distribution and the proportion of very short DNA fragments, both sources of shearing can be measured using commonly used laboratory techniques, providing a suitable quantification of DNA integrity of DNA for sequencing with long-read technologies.

The European Reference Genome Atlas (ERGA) consortium aims to generate a reference genome catalogue for all of Europe's eukaryotic biodiversity. The biological material underlying this mission, the specimens and their derived samples, are provided through ERGA's pan-European network. To demonstrate the community's capability and capacity to realise ERGA's ambitious mission, the ERGA Pilot project was initiated. In support of the ERGA Pilot effort to generate reference genomes for European biodiversity, the ERGA Sampling and Sample Processing committee (SSP) was formed by volunteer experts from ERGA's member base. SSP aims to aid participating researchers through i) establishing standards for and collecting of sample/specimen metadata; ii) prioritisation of species for genome sequencing; and iii) development of taxon-specific collection guidelines including logistics support. SSP serves as the entry point for sample providers to the ERGA genomic resource production infrastructure and guarantees that ERGA's high-quality standards are upheld throughout sample collection and processing. With the volume of researchers, projects, consortia, and organisations with interests in genomics resources expanding, this manuscript shares important experiences and lessons learned during the development of standardised operational procedures and sample provider support. The manuscript details our experiences in incorporating the FAIR and CARE principles, species prioritisation, and workflow development, which could be useful to individuals as well as other initiatives.

Abstract The European Reference Genome Atlas (ERGA) consortium aims to generate a reference genome catalogue for all of Europe's eukaryotic biodiversity. The biological material underlying this mission, the specimens and their derived samples, are provided through ERGA’s pan-European network. To demonstrate the community’s capability and capacity to realise ERGA’s ambitious mission, the ERGA Pilot project was initiated. In support of the ERGA Pilot effort to generate reference genomes for European biodiversity, the ERGA Sampling and Sample Processing committee (SSP) was formed by volunteer experts from ERGA’s member base. SSP aims to aid participating researchers through (i) establishing standards for and collecting of sample/specimen metadata; (ii) prioritisation of species for genome sequencing; and (iii) development of taxon-specific collection guidelines including logistics support. SSP serves as the entry point for sample providers to the ERGA genomic resource production infrastructure and guarantees that ERGA’s high-quality standards are upheld throughout sample collection and processing. With the volume of researchers, projects, consortia, and organisations with interests in genomics resources expanding, this manuscript shares important experiences and lessons learned during the development of standardised operational procedures and sample provider support. The manuscript details our experiences in incorporating the FAIR and CARE principles, species prioritisation, and workflow development, which could be useful to individuals as well as other initiatives.

Abstract Studies in vertebrate genomics require sampling from a broad range of tissue types, taxa, and localities. Recent advancements in long-read and long-range genome sequencing have made it possible to produce high-quality chromosome-level genome assemblies for almost any organism. However, adequate tissue preservation for the requisite ultra-high molecular weight DNA (uHMW DNA) remains a major challenge. Here we present a comparative study of preservation methods for field and laboratory tissue sampling, across vertebrate classes and different tissue types. We find that no single method is best for all cases. Instead, the optimal storage and extraction methods vary by taxa, by tissue, and by down-stream application. Therefore, we provide sample preservation guidelines that ensure sufficient DNA integrity and amount required for use with long-read and long-range sequencing technologies across vertebrates. Our best practices generated the uHMW DNA needed for the high-quality reference genomes for Phase 1 of the Vertebrate Genomes Project (VGP), whose ultimate mission is to generate chromosome-level reference genome assemblies of all ∼70,000 extant vertebrate species.

Abstract Supergenes govern balanced polymorphisms in a wide range of systems. The reciprocal placement of stigmas and anthers in pin and thrum floral morphs of distylous species constitutes an iconic example of a balanced polymorphism governed by a supergene, the distyly S- locus. Recent studies have shown that the Primula and Turnera distyly supergenes are both hemizygous in thrums, but it remains unknown if hemizygosity is pervasive among distyly S -loci. Here we have characterized the genetic architecture and evolution of the distyly supergene in Linum by generating a chromosome-level genome assembly of Linum tenue , followed by the identification of the S -locus using population genomic data. We show that hemizygosity and thrum-specific expression of S -linked genes, including a pistil-expressed candidate gene for style length, are major features of the Linum S -locus. Structural variation is likely instrumental for recombination suppression, and although the non-recombining dominant haplotype has accumulated transposable elements, S- linked genes are not under relaxed purifying selection. Our findings reveal remarkable convergence in the genetic architecture and evolution of independently derived distyly supergenes. The chromosome-level genome assembly and detailed characterization of the distyly S -locus in L. tenue will facilitate elucidation of molecular mechanisms underlying the different forms of flowers described by Darwin.

Abstract Background Xenacoelomorpha is a marine phylum of microscopic worms that is an important model system for understanding the evolution of key bilaterian novelties, such as the nervous or excretory systems. Nevertheless, Xenacoelomorpha genomics has been restricted to the few species that either can be cultured in the lab or are centimetres long. Thus far, no genomes are available for Nemertodermatida, one of the phylum’s main clades and whose origin has been dated more than 400 million years ago. Results We present the first nemertodermatid genome sequenced from a single specimen of Nemertoderma westbladi . Although genome contiguity remains challenging (N50: 48 kbps), it is very complete (BUSCO: 81.4%, Metazoa; 91.8%, Eukaryota) and the quality of the annotation allows fine-detail analyses of genome evolution. Acoelomorph genomes seem to be conserved in terms of the percentage of repeats, number of genes, number of exons per gene and intron size. In addition, a high fraction of genes present in both protostomes and deuterostomes are absent in Acoelomorpha. Interestingly, we show that all genes related to the excretory system are present in Xenacoelomorpha but Osr , a key element in the development of these organs and whose acquisition might explain the origin of the specialised excretory system. Conclusions Overall, these analyses highlight the potential of the Ultra-Low Input DNA protocol and HiFi to generate high-quality genomes from single animals, even for relatively large genomes, making it a feasible option for sequencing challenging taxa, which will be an exciting resource for comparative genomics analyses.

Abstract Krill is a vital food source for many marine animals but also strongly impacted by climate change. Genetic adaptation could support populations, but remains uncharacterized. We assembled the 19 Gb Northern krill genome and compared genome-scale variation among 74 specimens from the colder Atlantic Ocean and warmer Mediterranean Sea. The genome is dominated by methylated transposable elements and contains many duplicated genes implied in molting and vision. Analysis of 760 million SNPs indicates extensive homogenizing gene-flow among populations. Nevertheless, we detect extreme divergence across hundreds of genes, governing ecophysiological functions like photoreception, circadian regulation, reproduction and thermal tolerance. Such standing variation may be essential for resilience in zooplankton, necessitating insight into adaptive variation to forecast their roles in future marine ecosystems and support ocean conservation. One-Sentence Summary Genome-scans of Northern krill link genes for photoreception, reproduction and thermal tolerance to ecological adaptation.

Distyly is an iconic floral polymorphism governed by a supergene, which promotes efficient pollen transfer and outcrossing through reciprocal differences in the position of sexual organs in flowers, often coupled with heteromorphic self-incompatibility (SI). Distyly has evolved convergently in multiple flowering plant lineages, but has also broken down repeatedly, often resulting in homostylous, self-compatible populations with elevated rates of self-fertilization relative to their distylous ancestors. Here, we aimed to study the causes and consequences of the shift to homostyly in Linum trigynum, which is closely related to distylous Linum tenue. Building on a high-quality genome assembly, we show that L. trigynum harbors a genomic region homologous to the dominant haplotype of the distyly supergene in L. tenue, suggesting that loss of distyly first occurred in a short-styled individual. In contrast to homostylous Primula and Fagopyrum, L. trigynum harbors no fixed loss-of-function mutations in coding sequences of S-linked distyly candidate genes. Instead, floral gene expression analyses and controlled crosses suggest that mutations downregulating the S-linked LtWDR-44 candidate gene for male SI and/or anther height could underlie homostyly in L. trigynum. Population genomic analyses of 224 whole-genome sequences further demonstrate that L. trigynum is highly self-fertilizing, exhibits significantly lower genetic diversity genome-wide and is experiencing relaxed purifying selection on nonsynonymous mutations relative to L. tenue, despite the relatively recent split of L. trigynum and L. tenue. Our analyses elucidate the tempo and mode of loss of distyly in L. trigynum, and advances our understanding of a common evolutionary transition in flowering plants.

Amplicon sequencing of the 16S rRNA gene is the predominant method to quantify microbial compositions of environmental samples and to discover previously unknown lineages. Its unique structure of interspersed conserved and variable regions is an excellent target for PCR and allows for classification of reads at all taxonomic levels. However, the relatively few phylogenetically informative sites prevent confident phylogenetic placements of novel lineages that are deep branching relative to reference taxa. This problem is exacerbated when only short 16S rRNA gene fragments are sequenced. To resolve their placement, it is common practice to gather more informative sites by combining multiple conserved genes into concatenated datasets. This however requires genomic data which may be obtained through relatively expensive metagenome sequencing and computationally demanding analyses. Here we develop a protocol that amplifies a large part of 16S and 23S rRNA genes within the rRNA operon, including the ITS region, and sequences the amplicons with PacBio long-read technology. We tested our method with a synthetic mock community and developed a read curation pipeline that reduces the overall error rate to 0.18%. Applying our method on four diverse environmental samples, we were able to capture near full-length rRNA operon amplicons from a large diversity of prokaryotes. Phylogenetic trees constructed with these sequences showed an increase in statistical support compared to trees inferred with shorter, Illumina-like sequences using only the 16S rRNA gene (250 bp). Our method is a cost-effective solution to generate high quality, near full-length 16S and 23S rRNA gene sequences from environmental prokaryotes.