DY
Dilmurat Yusuf
Author with expertise in Management and Reproducibility of Scientific Workflows
Achievements
This user has not unlocked any achievements yet.
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
6
(33% Open Access)
Cited by:
8
h-index:
15
/
i10-index:
16
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
0

Strategies for analyzing bisulfite sequencing data

Katarzyna Wreczycka et al.Feb 17, 2017
DNA methylation is one of the main epigenetic modifications in the eukaryotic genome; it has been shown to play a role in cell-type specific regulation of gene expression, and therefore cell-type identity. Bisulfite sequencing is the gold-standard for measuring methylation over the genomes of interest. Here, we review several techniques used for the analysis of high-throughput bisulfite sequencing. We introduce specialized short-read alignment techniques as well as pre/post-alignment quality check methods to ensure data quality. Furthermore, we discuss subsequent analysis steps after alignment. We introduce various differential methylation methods and compare their performance using simulated and real bisulfite sequencing datasets. We also discuss the methods used to segment methylomes in order to pinpoint regulatory regions. We introduce annotation methods that can be used for further classification of regions returned by segmentation and differential methylation methods. Finally, we review software packages that implement strategies to efficiently deal with large bisulfite sequencing datasets locally and we discuss online analysis workflows that do not require any prior programming skills. The analysis strategies described in this review will guide researchers at any level to the best practices of bisulfite sequencing analysis.
0

Isolation of nucleic acids from low biomass samples: detection and removal of sRNA contaminants

Anna Heintz‐Buschart et al.Dec 14, 2017
Background: Sequencing-based analyses of low-biomass samples are known to be prone to misinterpretation due to the potential presence of contaminating molecules derived from laboratory reagents and environments. Due to its inherent instability, contamination with RNA is usually considered to be unlikely. Results: Here we report the presence of small RNA (sRNA) contaminants in widely used microRNA extraction kits and means for their depletion. Sequencing of sRNAs extracted from human plasma samples was performed and significant levels of non-human (exogenous) sequences were detected. The source of the most abundant of these sequences could be traced to the microRNA extraction columns by qPCR-based analysis of laboratory reagents. The presence of artefactual sequences originating from the confirmed contaminants were furthermore replicated in a range of published datasets. To avoid artefacts in future experiments, several protocols for the removal of the contaminants were elaborated, minimal amounts of starting material for artefact-free analyses were defined, and the reduction of contaminant levels for identification of bona fide sequences using 'ultra-clean' extraction kits was confirmed. Conclusion: This is the first report of the presence of RNA molecules as contaminants in laboratory reagents. The described protocols should be applied in the future to avoid confounding sRNA studies.
0

Reproducible inference of transcription factor footprints in ATAC-seq and DNase-seq datasets via protocol-specific bias modeling

Aslihan Calviello et al.Mar 19, 2018
DNase-seq and ATAC-seq are broadly used methods to assay open chromatin regions genome-wide. The single nucleotide resolution of DNase-seq has been further exploited to infer transcription factor binding sites (TFBS) in regulatory regions via footprinting. Recent studies have demonstrated the sequence bias of DNase I and its adverse effects on footprinting efficiency. However, footprinting and the impact of sequence bias have not been extensively studied for ATAC-seq. Here, we undertake a systematic comparison of the two methods and show that a modification to the ATAC-seq protocol increases its yield and its agreement with DNase-seq data from the same cell line. We demonstrate that the two methods have distinct sequence biases and correct for these protocol-specific biases when performing footprinting. Despite differences in footprint shapes, the locations of the inferred footprints in ATAC-seq and DNase-seq are largely concordant. However, the protocol-specific sequence biases in conjunction with the sequence content of TFBSs impacts the discrimination of footprint from background, which leads to one method outperforming the other for some TFs. Finally, we address the depth required for reproducible identification of open chromatin regions and TF footprints.
3

TREK-1 knock-down in human atrial fibroblasts leads to a myofibroblastic phenotype: a role in phenoconversion and over-view of mechano-sensitive channel mRNA expression in cardiac diseases

Elisa Darkow et al.Jul 22, 2022
Abstract Cardiac cell mechanical environment changes on a beat-by-beat basis and also in the course of various cardiac diseases. Cells sense and adapt to such mechanical cues via specialized mechano-sensors mediating adaptive signaling cascades. Here, we report TREK-1 mRNA expression and activity in human atrial fibroblasts and reveal a cross talk between TREK-1 and fibroblast phenoconversion. With the aim to reveal additional candidates underlying mechano-transduction relevant to cardiac diseases, we investigated mechano-sensitive ion channels (MSC) mRNA expression in diseased and non-diseased human hearts. Our results showed higher TREK-1 expression and activity in fibroblasts compared to myofibroblasts and we found that TREK-1 down-regulation leads a more myofibroblastic phenotype suggesting a role for this mechano-sensor in phenoconversion. In addition, TREK-1 is preferentially expressed in the left atrium compared to the right one and its expression is not significantly changed when fibroblasts from patients in sinus rhythm vs. sustained atrial fibrillation are compared. At the whole-heart level, numerous MSC were differentially expressed between atrial and ventricular or between non-diseased and diseased tissue samples. Thus, we identify atrial fibroblast-specific TREK-1 expression and activity and reveal a role of TREK-1 in atrial fibroblast pheno-conversion. We also provide a comprehensive overview of cardiac MSC mRNA expression in atrial and ventricular tissue from diseased and non-diseased patients, identifying potential novel candidates underlying mechanotransduction in cardiac diseases.