Abstract Using incipient lines of the Collaborative Cross (CC), a murine genetic reference population, we previously identified a quantitative trait loci (QTL) associated with low SARS-CoV titer. In this study, we integrated sequence information and RNA expression of genes within the QTL to identify mucin 4 ( Muc4 ) as a high priority candidate for controlling SARS-CoV titer in the lung. To test this hypothesis, we infected Muc4 -/- mice and found that female, but not male, Muc4 -/- mice developed more weight loss and disease following infection with SARS-CoV. Female Muc4 -/- mice also had more difficulty breathing despite reduced lung pathology; however, no change in viral titers was observed. Comparing across viral families, studies with chikungunya virus, a mosquito-borne arthralgic virus, suggests that Muc4’s impact on viral pathogenesis may be widespread. Although not confirming the original titer QTL, our data identifies a role for Muc4 in the SARS-CoV disease and viral pathogenesis. Importance Given the recent emergence of SARS-CoV-2, this work suggest that Muc4 expression plays a protective role in female mice not conserved in male mice following SARS-CoV infection. With the SARS-CoV-2 outbreak continuing, treatments that modulate or enhance Muc4 activity may provide an avenue for treatment and improved outcomes. In addition, the work highlights the importance of studying host factors including host genetics and biological sex as key parameters influencing infection and disease outcomes.

ABSTRACT The recent FDA approval of the FLT3 inhibitor, gilteritinib, for AML represents a major breakthrough for treatment of FLT3 mutated AML. However, patients only respond to gilteritinib for 6-7 months due to the emergence of drug resistance. Clinical resistance to gilteritinib is often associated with expansion of NRAS mutations, and less commonly via gatekeeper mutations in FLT3, with F691L being the most common. We developed an in vitro model that charts the temporal evolution of resistance to gilteritinib from early microenvironmental-mediated resistance to late intrinsic resistance mutations. Our model system accurately recapitulates the expansion of NRAS mutations and the F691L gatekeeper mutations found in AML patients. As part of this study, we also identified a novel FLT3 N701K mutation that also appeared to promote resistance to gilteritinib. Using the Ba/F3 system, we demonstrate that N701K mutations effectively act like a gatekeeper mutation and block gilteritinib from binding to FLT3, thereby promoting resistance. Structural modeling of FLT3 reveals how N701K, and other reported gilteritinib resistance mutations, obstruct the gilteritinib binding pocket on FLT3. Interestingly, FLT3 N701K does not block quizartinib binding, suggesting that FLT3 N701K mutations are more specific for type 1 FLT3 inhibitors (gilteritinib, midostaurin, and crenolanib). Thus, our data suggests that for the FLT3 N701K mutation, switching classes of FLT3 inhibitors may restore clinical response. As the use of gilteritinib expands in the clinic, this information will become critical to define clinical strategies to manage gilteritinib resistance.