B-cell posttransplantation lymphoproliferative disorder (B-PTLD) is a rare but severe complication of transplantation, with no consensus on best treatment practice. This prospective trial, the first to test a treatment for PTLD, was designed to evaluate the efficacy and safety of rituximab in patients with B-PTLD after solid organ transplantation (SOT). Forty-six patients were included and 43 patients were analyzed. Patients were eligible if they had untreated B-PTLD that was not responding to tapering of immunosuppression. Treatment consisted of 4 weekly injections of rituximab at 375 mg/m2. At day (d) 80, 37 (86%) patients were alive, and the response rate was 44.2%, including 12 complete response/unconfirmed complete response (CR/CRu). The only factor predictive of a response at d80 was a normal lactate dehydrogenase level (P = .007, odds ratio [OR] = 6.9). At d360, responses were maintained in 68% of patients, and 56% of patients were alive. The overall survival rate at 1 year was 67%. We conclude that rituximab is effective and safe in PTLD, with stable responses at 1 year. The response rate and overall survival might be improved by combining rituximab with other treatments.

Abstract Type I interferon (IFN) is a potent antitumoral drug, with an important history in the treatment of hematologic malignancies. However, its pleiotropic nature leads to severe dose-limiting toxicities that blunt its therapeutic potential. To achieve selective targeting of specific immune or tumor cells, AcTakines (Activity-on-Target Cytokines), i.e., immunocytokines utilizing attenuated cytokines, and clinically optimized A-Kines™ were developed. In syngeneic murine models, the CD20-targeted murine IFNα2-based AcTaferons (AFNs) have demonstrated clear antitumoral effects, with excellent tolerability. The current study explores the antitumoral potential of the humanized huCD20-Fc-AFN in 5 different humanized patient derived xenograft (PDX) models of huCD20 + aggressive B non-Hodgkin lymphomas (B-NHLs). The huCD20-Fc-AFN consists of a huCD20-specific single-domain antibody (VHH) linked through a heterodimeric ‘knob-in-hole’ human IgG1 Fc molecule to an attenuated huIFNα2 sequence. An in vitro targeting efficacy of up to 1.000-fold could be obtained, without detectable in vivo toxicities, except for selective (on-target) and reversible B cell depletion. Treatment with huCD20-Fc-AFN significantly increased the median overall survival (mOS) in both non-humanized (mOS 31 to 45 days; HR = 0.26; p = 0.001), and humanized NSG/NOG mice (mOS 34 to 80 days; HR = 0.37; p < 0.0001). In humanized mice, there was a trend for increased survival when compared to equimolar rituximab (mOS 49 to 80 days; HR = 0.73; p = 0.09). The antitumoral effects of huCD20-Fc-AFN were partly due to direct effects of type I IFN on the tumor cells, but additional effects via the human immune system are essential to obtain long-term remissions. To conclude, huCD20-Fc-AFN could provide a novel therapeutic strategy for huCD20-expressing aggressive B-NHLs. Graphical Abstract

Abstract CD70 is an attractive target for chimeric antigen receptor (CAR) T cell therapy as treatment for both solid and liquid malignancies. However, functionality of CD70-specific CARs is only modest. Here, we optimized a CD70-specific VHH based CAR (nanoCAR). We evaluated the nanoCARs in clinically relevant models in vitro , using co-cultures of CD70-specific nanoCAR T cells with malignant rhabdoid tumor organoids, and in vivo by using a diffuse large B cell lymphoma (DLBCL) patient-derived xenograft (PDX) model. Whereas the nanoCAR T cells were highly efficient in organoid co-cultures, they showed only modest efficacy in the PDX model. Knocking out CD70 expression by the nanoCAR T cells resulted in dramatically enhanced functionality in the PDX model, suggesting that endogenous CD70 interaction with the nanoCAR induces exhaustion. Through single-cell transcriptomics, we obtained evidence that CD70KO CD70-specific nanoCAR T cells are protected from antigen induced exhaustion. Our data shows that CARs targeted to endogenous T cell antigens, negatively affect CAR T cell functionality by inducing an exhausted state which can be overcome by knocking out the specific target, in this case CD70.

Abstract The glucocorticoid receptor (GR) is a crucial drug target in multiple myeloma as its activation with glucocorticoids effectively triggers myeloma cell death. However, as high-dose glucocorticoids are also associated with deleterious side effects, novel approaches are urgently needed to improve GR action in myeloma. Here we reveal a functional crosstalk between GR and the mineralocorticoid receptor (MR) that culminates in improved myeloma cell killing. We show that the GR agonist Dexamethasone (Dex) downregulates MR levels in a GR-dependent way in myeloma cells. Co-treatment of Dex with the MR antagonist Spironolactone (Spi) enhances Dex-induced cell killing in primary, newly diagnosed GC-sensitive myeloma cells. In a relapsed GC-resistant setting, Spi alone induces distinct myeloma cell killing. On a mechanistic level, we find that a GR-MR crosstalk likely arises from an endogenous interaction between GR and MR in myeloma cells. Quantitative dimerization assays show that Spi reduces Dex-induced GR-MR heterodimerization and completely abolishes Dex-induced MR-MR homodimerization, while leaving GR-GR homodimerization intact. Unbiased transcriptomics analyses reveal that c-myc and many of its target genes are downregulated most by combined Dex-Spi treatment. Proteomics analyses further identify that several metabolic hallmarks are modulated most by this combination treatment. Finally, we identified a subset of Dex-Spi downregulated genes and proteins that may predict prognosis in the CoMMpass myeloma patient cohort. Our study demonstrates that GR-MR crosstalk is therapeutically relevant in myeloma as it provides novel strategies for glucocorticoid-based dose-reduction.