Abstract The onset of protein conformation diseases is inextricably linked to aging. During aging, cellular protein quality control declines which results in diminished protein homeostasis (proteostasis). In model organisms, such as C. elegans and killifish, proteostatic decline with age has been linked to the onset of aggregation of proteins in wild-type animals, observed through detergent-insoluble fractionation. Analysis of studies applying detergent-insoluble fractionation in mice revealed that the composition of detergent-insoluble proteins changes with age. However, these individual fractionation studies have generally been limited to small numbers of mice. Herein, we expand on our previous analysis by extending the experiments to a larger cohort of mice and to two brain regions implicated in neurodegenerative diseases, the cortex and hippocampus. These experiments unveil insights into alterations in the abundance and solubility of proteins involved in protein quality control and in inflammation. For example, ribosomal proteins and many chaperone proteins are downregulated with age. Consistent enrichment of subunits of the extracellular C1q complex was also observed in both brain regions alongside an increase in immunoglobulin signal indicating that markers of increased inflammation may also become insoluble during aging. More generally, insoluble proteins share features observed in datasets of impaired protein degradation indicating that the loss of activity of cellular protein degradation machinery may contribute to the specific aggregation of these proteins.

Heat-stress triggers the formation of condensates known as stress granules (SGs), which store non-translating mRNA and stalled translation initiation complexes. To gain a better understanding of SGs, we identified yeast proteins that sediment after heat-shock by mass spectrometry. Heat-regulated proteins are biased toward a subset of abundant proteins that are significantly enriched in intrinsically disordered regions (IDRs). SG localization of over 80 heat-regulated proteins was confirmed using microscopy, including 32 proteins that were not known previously to localize to SGs. We find that several IDRs are sufficient to mediate SG recruitment. Moreover, the diffusive exchange of IDRs within SGs, observed via FRAP, can be highly dynamic while other components remain immobile. Lastly, we showed that the IDR of the Ubp3 deubiquitinase is critical for SG formation. This work confirms that IDRs play an important role in cellular compartmentalization upon stress, can be sufficient for SG incorporation, can remain dynamic in vitrified SGs, and play a vital role during heat-stress.

Cellular processes arise from the dynamic organization of proteins in networks of physical interactions. Mapping the complete network of biologically relevant protein-protein interactions, the interactome, has therefore been a central objective of high-throughput biology. Yet, because widely used methods for high-throughput interaction discovery rely on heterologous expression or genetically manipulated cell lines, the dynamics of protein interactions across physiological contexts are poorly understood. Here, we use a quantitative proteomic approach combining protein correlation profiling with stable isotope labelling of mammals (PCP-SILAM) to map the interactomes of seven mouse tissues. The resulting maps provide the first proteome-scale survey of interactome dynamics across mammalian tissues, revealing over 27,000 unique interactions with an accuracy comparable to the highest-quality human screens. We identify systematic suppression of cross-talk between the evolutionarily ancient housekeeping interactome and younger, tissue-specific modules. Rewiring of protein interactions across tissues is widespread, and is poorly predicted by gene expression or coexpression. Rewired proteins are tightly regulated by multiple cellular mechanisms and implicated in disease. Our study opens up new avenues to uncover regulatory mechanisms that shape in vivo interactome responses to physiological and pathophysiological stimuli in mammalian systems.

Summary Accurate and efficient folding of nascent protein sequences into their native state requires support from the protein homeostasis network. Herein we probed which newly translated proteins are less thermostable to infer which polypeptides require more time to fold within the proteome. Specifically, we determined which of these proteins were more susceptible to misfolding and aggregation under heat stress using pulse SILAC coupled mass spectrometry. These proteins are abundant, short, and highly structured. Notably these proteins display a tendency to form β-sheet structures, a configuration which typically requires more time for folding, and were enriched for Hsp70/Ssb and TRiC/CCT binding motifs, suggesting a higher demand for chaperone-assisted folding. These polypeptides were also more often components of stable protein complexes in comparison to other proteins. All evidence combined suggests that a specific subset of newly translated proteins requires more time following synthesis to reach a thermostable native state in the cell.