IL
Iben Lundgaard
Author with expertise in Brain Fluid Dynamics and Waste Clearance Mechanisms
Achievements
Cited Author
Open Access Advocate
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
8
(75% Open Access)
Cited by:
1,095
h-index:
23
/
i10-index:
30
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
0

Direct neuronal glucose uptake heralds activity-dependent increases in cerebral metabolism

Iben Lundgaard et al.Apr 23, 2015
Metabolically, the brain is a highly active organ that relies almost exclusively on glucose as its energy source. According to the astrocyte-to-neuron lactate shuttle hypothesis, glucose is taken up by astrocytes and converted to lactate, which is then oxidized by neurons. Here we show, using two-photon imaging of a near-infrared 2-deoxyglucose analogue (2DG-IR), that glucose is taken up preferentially by neurons in awake behaving mice. Anaesthesia suppressed neuronal 2DG-IR uptake and sensory stimulation was associated with a sharp increase in neuronal, but not astrocytic, 2DG-IR uptake. Moreover, hexokinase, which catalyses the first enzymatic steps in glycolysis, was highly enriched in neurons compared with astrocytes, in mouse as well as in human cortex. These observations suggest that brain activity and neuronal glucose metabolism are directly linked, and identiy the neuron as the principal locus of glucose uptake as visualized by functional brain imaging. The brain is a highly active organ that relies almost exclusively on glucose as its energy source, but whether glucose is directly taken up by neurons or whether it is converted to lactate by astrocytes before neuronal uptake is still unclear. Here the authors perform in vivoimaging in awake mice and show evidence in support of the direct uptake of glucose by neurons.
0

Neuronal activity regulates remyelination via glutamate signalling to oligodendrocyte progenitors

Hélène Gautier et al.Oct 6, 2015
Myelin regeneration can occur spontaneously in demyelinating diseases such as multiple sclerosis (MS). However, the underlying mechanisms and causes of its frequent failure remain incompletely understood. Here we show, using an in-vivo remyelination model, that demyelinated axons are electrically active and generate de novo synapses with recruited oligodendrocyte progenitor cells (OPCs), which, early after lesion induction, sense neuronal activity by expressing AMPA (α-amino-3-hydroxy-5-methyl-4-isoxazolepropionic acid)/kainate receptors. Blocking neuronal activity, axonal vesicular release or AMPA receptors in demyelinated lesions results in reduced remyelination. In the absence of neuronal activity there is a ∼6-fold increase in OPC number within the lesions and a reduced proportion of differentiated oligodendrocytes. These findings reveal that neuronal activity and release of glutamate instruct OPCs to differentiate into new myelinating oligodendrocytes that recover lost function. Co-localization of OPCs with the presynaptic protein VGluT2 in MS lesions implies that this mechanism may provide novel targets to therapeutically enhance remyelination.
0

Microgliosis driven by palmitate exposure alters energy metabolism and extracellular vesicles release that impact behavior and systemic metabolism

Gabriela Paula et al.Apr 6, 2024
Abstract Dietary patterns that include an excess of foods rich in saturated fat are associated with brain dysfunction. Although microgliosis has been proposed to play a key role in the development of brain dysfunction in diet-induced obesity (DIO), neuroinflammation with cytokine over-expression is often not always observed. Thus, mechanisms by which microglia contribute to brain impairment in DIO are uncertain. Using the BV2 cell model, we investigated the gliosis profile of microglia exposed to palmitate (200 µmol/L), a saturated fatty acid abundant in high-fat diet and in the brain of obese individuals. We observed that microglia respond to a 24-hour palmitate exposure with increased proliferation, and with a metabolic network rearrangement that favors energy production from glycolysis rather than oxidative metabolism, despite stimulated mitochondria biogenesis. In addition, while palmitate did not induce increased cytokine expression, it modified the protein cargo of released extracellular vesicles (EVs). When administered intra-cerebroventricularly to mice, EVs from palmitate-exposed microglia in vitro led to memory impairment, depression-like behavior, and glucose intolerance, when compared to mice receiving EVs from vehicle-treated microglia. We conclude that microglia exposed to palmitate can mediate brain dysfunction through the cargo of shed EVs.