Abstract Axon loss underlies symptom onset and progression in many neurodegenerative disorders. Axon degeneration in injury and disease is promoted by activation of the nicotinamide adenine dinucleotide (NAD)-consuming enzyme SARM1 (sterile alpha and TIR motif-containing protein 1). Here, we report vacor mononucleotide (VMN), a metabolite of the pesticide and neurotoxin vacor, as the most potent yet SARM1 activator. Removal of SARM1 shows complete rescue from vacor-induced neuron and axon death in vitro and in vivo . We present the crystal structure of VMN bound to the Drosophila SARM1 regulatory armadillo-repeat domain, thus facilitating drug development to prevent SARM1 activation in human disease. This study indicates the likely mechanism of action of vacor as a pesticide and lethal neurotoxin in humans, provides important new tools for drug discovery, and further demonstrates that SARM1 removal can permanently block programmed axon death specifically induced by toxicity as well as genetic mutation.

ABSTRACT SARM1 is an NAD glycohydrolase and TLR adapter with an essential, prodegenerative role in programmed axon death (Wallerian degeneration). It has low basal NADase activity that becomes strongly activated by NAD precursor NMN. Very high levels of NAD oppose this activation, competing for the same allosteric site on SARM1’s regulatory ARM domain. Injury or diseases that deplete axons of NMNAT2, an essential enzyme converting NMN to NAD, cause SARM1 activation. The resulting NAD degradation by SARM1, combined with loss of NAD synthesis by NMNAT2, causes rapid depletion of axonal NAD. This NAD loss is widely assumed to mediate axon death and is consequently a key focus for therapeutic strategies for axonopathies. However, like other NAD(P) glycohydrolases, SARM1 has additional enzyme activities whose contributions, consequences and regulation need to be fully understood. Here, we compare the multiple actions and regulation of recombinant human SARM1 with those of two other NAD(P) glycohydrolases, human CD38 and Aplysia californica ADP ribosyl cyclase. We find that SARM1 has the highest transglycosidation (base exchange) activity of these enzymes at neutral pH and with some bases this dominates NAD(P) hydrolysis and cyclisation. Moreover, like its NADase and NADPase reactions, SARM1-mediated base exchange at neutral pH is activated by increases in the NMN:NAD ratio, which we show for the first time can act in the presence of physiological levels of both metabolites. We establish that SARM1 base exchange is the most likely physiological source of calcium mobilizing agent NaADP, and potentially of other NAD(P) analogues, which could contribute to axon and cell death. We also identify regulatory effects of free pyridine bases, of NADP and of nicotinic acid riboside (NaR) on SARM1 that represent further therapeutic opportunities. These data will help to pinpoint which of the multiple functions of SARM1 is responsible for axon degeneration and how it can be optimally targeted to block axon degeneration in disease.

The three nicotinamide mononucleotide adenylyltransferase (NMNAT) family members synthesize the electron carrier nicotinamide adenine dinucleotide (NAD+) and are essential for cellular metabolism. In mammalian axons, NMNAT activity appears to be required for axon survival and is predominantly provided by NMNAT2. NMNAT2 has recently been shown to also function as a chaperone to aid in the refolding of misfolded proteins. Nmnat2 deficiency in mice, or in its ortholog dNmnat in Drosophila, results in axon outgrowth and survival defects. Peripheral nerve axons in NMNAT2-deficient mice fail to extend and innervate targets, and skeletal muscle is severely underdeveloped. In addition, removing NMNAT2 from established axons initiates axon death by Wallerian degeneration. We report here on two stillborn siblings with fetal akinesia deformation sequence (FADS), severely reduced skeletal muscle mass and hydrops fetalis. Clinical exome sequencing identified compound heterozygous NMNAT2 variant alleles in both cases. Both protein variants are incapable of supporting axon survival in mouse primary neuron cultures when overexpressed. In vitro assays demonstrate altered protein stability and/or defects in NAD+ synthesis and chaperone functions. Thus, both patient NMNAT2 alleles are null or severely hypo-morphic. These data indicate a previously unknown role for NMNAT2 in human neurological development and provide the first direct molecular evidence to support the involvement of Wallerian degeneration in a human axonal disorder.

We identified a homozygous missense mutation in the gene encoding NAD synthesizing enzyme NMNAT2 in two siblings with childhood onset polyneuropathy with erythromelalgia. No additional homozygotes for this rare allele, which leads to amino acid substitution T94M, were present among the unaffected relatives tested or in the 60,000 exomes of the ExAC database. For axons to survive, axonal NMNAT2 activity has to be maintained above a threshold level but the T94M mutation confers a partial loss of function both in the ability of NMNAT2 to support axon survival and in its enzymatic properties. Electrophysiological tests and histological analysis of sural nerve biopsies in the patients were consistent with loss of distal sensory and motor axons. Thus, it is likely that NMNAT2 mutation causes this pain and axon loss phenotype making this the first disorder associated with mutation of a key regulator of Wallerian-like axon degeneration in humans. This supports indications from numerous animal studies that the Wallerian degeneration pathway is important in human disease and raises important questions about which other human phenotypes could be linked to this gene.

Wallerian degeneration of physically injured axons involves a well-defined molecular pathway linking loss of axonal survival factor NMNAT2 to activation of pro-degenerative protein SARM1. Manipulating the pathway through these proteins led to the identification of non-axotomy insults causing axon degeneration by a Wallerian-like mechanism, including several involving mitochondrial impairment. Mitochondrial dysfunction is heavily implicated in Parkinson's disease, Charcot-Marie-Tooth disease, hereditary spastic paraplegia and other axonal disorders. However, whether and how mitochondrial impairment activates Wallerian degeneration has remained unclear. Here, we show that disruption of mitochondrial membrane potential leads to axonal NMNAT2 depletion in mouse sympathetic neurons, increasing the substrate-to-product ratio (NMN/NAD) of this NAD-synthesising enzyme, a metabolic fingerprint of Wallerian degeneration. The mechanism appears to involve both impaired NMNAT2 synthesis and reduced axonal transport. Expression of WLDS and Sarm1 deletion both protect axons after mitochondrial uncoupling. Blocking the pathway also confers neuroprotection and increases the lifespan of flies with Pink1 loss-of-function mutation, which causes severe mitochondrial defects. These data indicate that mitochondrial impairment replicates all the major steps of Wallerian degeneration, placing it upstream of NMNAT2 loss, with the potential to contribute to axon pathology in mitochondrial disorders.

Abstract Axon degeneration contributes to the disruption of neuronal circuit function in diseased and injured nervous systems. Severed axons degenerate following the activation of an evolutionarily conserved signaling pathway, which culminates in the activation of SARM1 in mammals to execute the pathological depletion of the metabolite NAD + . SARM1 NADase activity is activated by the NAD + precursor nicotinamide mononucleotide (NMN). In mammals, keeping NMN levels low potently preserves axons after injury, however, it remains unclear whether NMN is also a key mediator of axon degeneration, and dSarm activation, in flies. Here, we demonstrate that lowering NMN levels in Drosophila through the expression of a newly generated prokaryotic NMN-Deamidase (NMN-D) preserves severed axons for months and keeps them circuit-integrated for weeks. NMN-D alters the NAD + metabolic flux by lowering NMN, while NAD + remains unchanged in vivo . Increased NMN synthesis, by the expression of mouse nicotinamide phosphoribosyltransferase (mNAMPT), leads to faster axon degeneration after injury. We also show that NMN-induced activation of dSarm mediates axon degeneration in vivo . Finally, NMN-D delays neurodegeneration caused by loss of the sole NMN-consuming and NAD + -synthesizing enzyme dNmnat. Our results reveal a critical role for NMN in neurodegeneration in the fly, which extends beyond axonal injury. The potent neuroprotection by reducing NMN levels is similar or even stronger than the interference with other essential mediators of axon degeneration in Drosophila .