Objectives. The aim of this study was to determine the relations between spontaneous echo contrast, left atrial appendage blood flow velocity and thromboembolism. Background. Left atrial thrombus and spontaneous echo contrast, a putative marker of thromboembolic risk, are frequently located in the left atrial appendage. Measurement of left atrial appendage outflow Doppler velocity by transesophageal echocardiography is a recent technique for assessment of left atrial appendage function, which may be important in thrombus formation. Methods. Transthoracic and transesophageal echocardiographic studies were performed in 140 patients with atrial fibrillation (chronic in 80 patients, paroxysmal in 50 patients, first episode <2 weeks in 10 patients). The left atrium and appendage were inspected for thrombus and spontaneous echo contrast, which was graded from 0 (none) to 4+ (severe). Outflow velocity profiles were obtained by pulsed wave Doppler at the orifice of the left atrial appendage. Results. Left atrial spontaneous echo contrast was present in 78 patients (56%). In multivariate logistic regression analysis, spontaneous echo contrast was the only significant correlate of left atrial thrombus and was present in 14 (93%) of 15 patients. Spontaneous echo contrast and age were associated positively, and anticoagulant therapy was associated negatively, with previous thromboembolic events. Increasing grades of spontaneous echo contrast were associated with decreasing left atrial appendage blood velocity. The velocity in patients with thrombus was not significantly different from that in patients with 4+ spontaneous echo contrast. In multivariate linear regression analysis, the grade of spontaneous echo contrast was significantly and negatively associated with left atrial appendage velocity (p = −0.0001) and mitral regurgitation (p = −0.0002) and significantly and positively associated with left atrial area (p = 0.0005). The odds ratio for spontaneous echo contrast was 28:1 for low left atrial appendage blood flow velocity (<35 cm/s) and 96:1 for low velocity and the absence of mitral regurgitation. Conclusions. Spontaneous echo contrast is the cardiac factor most strongly associated with left atrial appendage thrombus and embolic events. Spontaneous echo contrast formation is promoted by reduced blood flow velocity and increased left atrial size but is diminished by mitral regurgitation.

The purpose of this study was to evaluate the usefulness of transesophageal echocardiography before electrical cardioversion in patients with atrial fibrillation and to determine the mechanism of thromboembolism after cardioversion.Thromboembolic complications after electrical cardioversion of atrial fibrillation have been attributed to the dislodgment of preexistent left atrial thrombus during the resumption of atrial contraction. Transesophageal echocardiography has been proposed as a method of screening patients for left atrial thrombus before cardioversion.Seventy transesophageal echocardiographic studies were performed in 66 patients, predominantly with nonvalvular atrial fibrillation, before direct current cardioversion. In addition, transesophageal echocardiography was performed during the cardioversion procedure in 15 patients and immediately after in 1 patient.Left atrial thrombus was detected in one patient (1.4%), and cardioversion was cancelled. Thromboembolic complications occurred in 4 patients, none of whom had evidence of left atrial thrombus before cardioversion. Within 10 s of successful cardioversion, left atrial spontaneous echo contrast appeared in five patients, increased in one patient and was unchanged in nine patients. Patients with new or increased spontaneous echo contrast had more impaired atrial contraction and slower initial heart rates after cardioversion than those without. Left ventricular contraction was also impaired transiently by cardioversion.Transesophageal echocardiographic detection of left atrial thrombus before direct current cardioversion is important but infrequent in patients with predominantly nonvalvular atrial fibrillation. The occurrence of thromboembolic complications in the absence of demonstrable left atrial thrombus and the new development of spontaneous echo contrast in association with the transient atrial dysfunction ("stunning") caused by cardioversion suggest that cardioversion may promote new thrombus formation, in which case all patients should receive full anticoagulant therapy at the time of cardioversion.

Laminopathies are a group of disorders caused by mutations in the LMNA gene that encodes the nuclear lamina proteins, lamin A and lamin C; their pathophysiological basis is unknown. We report that lamin A/C-deficient (Lmna(-/-)) mice develop rapidly progressive dilated cardiomyopathy (DCM) characterized by left ventricular (LV) dilation and reduced systolic contraction. Isolated Lmna(-/-) myocytes show reduced shortening with normal baseline and peak amplitude of Ca(2+) transients. Lmna(-/-) LV myocyte nuclei have marked alterations of shape and size with central displacement and fragmentation of heterochromatin; these changes are present but less severe in left atrial nuclei. Electron microscopy of Lmna(-/-) cardiomyocytes shows disorganization and detachment of desmin filaments from the nuclear surface with progressive disruption of the cytoskeletal desmin network. Alterations in nuclear architecture are associated with defective nuclear function evidenced by decreased SREBP1 import, reduced PPARgamma expression, and a lack of hypertrophic gene activation. These findings suggest a model in which the primary pathophysiological mechanism in Lmna(-/-) mice is defective force transmission resulting from disruption of lamin interactions with the muscle-specific desmin network and loss of cytoskeletal tension. Despite severe DCM, defects in nuclear function prevent Lmna(-/-) cardiomyocytes from developing compensatory hypertrophy and accelerate disease progression.

The T-box family transcription factor gene TBX20 acts in a conserved regulatory network, guiding heart formation and patterning in diverse species. Mouse Tbx20 is expressed in cardiac progenitor cells, differentiating cardiomyocytes, and developing valvular tissue, and its deletion or RNA interference–mediated knockdown is catastrophic for heart development. TBX20 interacts physically, functionally, and genetically with other cardiac transcription factors, including NKX2-5, GATA4, and TBX5, mutations of which cause congenital heart disease (CHD). Here, we report nonsense (Q195X) and missense (I152M) germline mutations within the T-box DNA-binding domain of human TBX20 that were associated with a family history of CHD and a complex spectrum of developmental anomalies, including defects in septation, chamber growth, and valvulogenesis. Biophysical characterization of wild-type and mutant proteins indicated how the missense mutation disrupts the structure and function of the TBX20 T-box. Dilated cardiomyopathy was a feature of the TBX20 mutant phenotype in humans and mice, suggesting that mutations in developmental transcription factors can provide a sensitized template for adult-onset heart disease. Our findings are the first to link TBX20 mutations to human pathology. They provide insights into how mutation of different genes in an interactive regulatory circuit lead to diverse clinical phenotypes, with implications for diagnosis, genetic screening, and patient follow-up. The T-box family transcription factor gene TBX20 acts in a conserved regulatory network, guiding heart formation and patterning in diverse species. Mouse Tbx20 is expressed in cardiac progenitor cells, differentiating cardiomyocytes, and developing valvular tissue, and its deletion or RNA interference–mediated knockdown is catastrophic for heart development. TBX20 interacts physically, functionally, and genetically with other cardiac transcription factors, including NKX2-5, GATA4, and TBX5, mutations of which cause congenital heart disease (CHD). Here, we report nonsense (Q195X) and missense (I152M) germline mutations within the T-box DNA-binding domain of human TBX20 that were associated with a family history of CHD and a complex spectrum of developmental anomalies, including defects in septation, chamber growth, and valvulogenesis. Biophysical characterization of wild-type and mutant proteins indicated how the missense mutation disrupts the structure and function of the TBX20 T-box. Dilated cardiomyopathy was a feature of the TBX20 mutant phenotype in humans and mice, suggesting that mutations in developmental transcription factors can provide a sensitized template for adult-onset heart disease. Our findings are the first to link TBX20 mutations to human pathology. They provide insights into how mutation of different genes in an interactive regulatory circuit lead to diverse clinical phenotypes, with implications for diagnosis, genetic screening, and patient follow-up. Structural malformations of the heart (congenital heart disease [CHD]) are extremely common, present in nearly 1 in 100 live births and 1 in 10 stillborns. Treatment of CHD often involves highly invasive surgery in childhood, conferring a major economic burden on health resources and a life-long emotional burden for affected individuals and families. A subset of CHD is familial, and, in some cases, causative genes have been identified, most encoding cardiac transcription factors including NKX2-5 (MIM 600584), GATA4 (MIM 600576), and TBX5 (MIM 601620).1Gruber PJ Epstein JA Development gone awry: congenital heart disease.Circ Res. 2004; 94: 273-283Crossref PubMed Scopus (105) Google Scholar These factors are part of a conserved regulatory network that controls cardiogenesis in species as diverse as man and insects.2Harvey RP NK-2 homeobox genes and heart development.Dev Biol. 1996; 178: 203-216Crossref PubMed Scopus (477) Google Scholar, 3Cripps RM Olson E Control of cardiac development by an evolutionarily conserved transcriptional network.Dev Biol. 2002; 246: 14-28Crossref PubMed Scopus (256) Google Scholar However, dominant mutations in cardiac developmental transcription factors account thus far for only a minority of familial cases and for few isolated cases of CHD.4Elliott DA Kirk E Yeoh T Chander S McKenzie F Taylor P Grossfeld P Fatkin D Jones O Hayes P et al.Cardiac homeobox gene NKX2-5 mutations and congenital heart disease: associations with atrial septal defect and hyperplastic left heart syndrome.J Am Coll Cardiol. 2003; 41: 2072-2076Abstract Full Text Full Text PDF PubMed Scopus (194) Google Scholar, 5McElhinney DB Geiger E Blinder J Benson W Goldmuntz E NKX2.5 mutations in patients with congenital heart disease.J Am Coll Cardiol. 2003; 42: 1650-1655Abstract Full Text Full Text PDF PubMed Scopus (291) Google Scholar Therefore, a major imperative in this field remains to dissect cardiac developmental pathways in detail and to understand how mutations in genes encoding the various components of these pathways cause CHD at the genetic and mechanistic levels. T-box transcription factors are characterized by the presence of a highly conserved, 180-aa, sequence-specific DNA-binding domain termed the “T-box.” These factors act as transcriptional activators and repressors and are known to function in a combinatorial and hierarchical fashion in many developmental processes.6Stennard FA Harvey RP T-box transcription factors and their roles in regulatory hierarchies in the developing heart.Development. 2005; 132: 4897-4910Crossref PubMed Scopus (125) Google Scholar At least seven members of the T-box gene family are expressed in the developing heart in humans and vertebrate models.6Stennard FA Harvey RP T-box transcription factors and their roles in regulatory hierarchies in the developing heart.Development. 2005; 132: 4897-4910Crossref PubMed Scopus (125) Google ScholarTBX1 (MIM 602054) is deleted in 22q11 deletion syndrome (MIM 188400 and 192430), the most common genetic deletion syndrome in humans, and has emerged as the leading candidate for causation of the complex cardiac and pharyngeal malformations that constitute the syndrome.7Yamagishi H Srivastava D Unravelling the genetic and developmental mysteries of 22q11 deletion syndrome.Trends Mol Med. 2003; 9: 383-389Abstract Full Text Full Text PDF PubMed Scopus (100) Google Scholar TBX1 has multiple roles in pharyngeal development, including, in mouse, regulation of the Fgf8 gene (GenBank accession number NM_010205), involved in maintenance and growth of neural crest cells and an anterior heart progenitor population (the anterior second heart field) that contributes cardiomyocytes, smooth muscle, and endothelial cells to the outflow tract.6Stennard FA Harvey RP T-box transcription factors and their roles in regulatory hierarchies in the developing heart.Development. 2005; 132: 4897-4910Crossref PubMed Scopus (125) Google Scholar, 8Buckingham ME Meilhac S Zaffran S Building the mammalian heart from two sources of myocardial cells.Nat Rev Genet. 2005; 6: 826-835Crossref PubMed Scopus (848) Google Scholar Mutations in TBX5 cause the rare autosomal dominant Holt-Oram syndrome (MIM 142900), characterized by congenital forelimb and cardiac malformations, the latter including atrial septal defect (ASD), ventricular septal defect (VSD), tetralogy of Fallot, hypoplastic left heart, and conduction abnormalities.9Basson CT Bachinsky DR Lin RC Levi T Elkins JA Soults J Grayzel D Kroumpouzou E Traill TA Leblanc-Straceski J et al.Mutations in human Tbx5 cause limb and cardiac malformation in Holt-Oram syndrome.Nat Genet. 1997; 15: 30-35Crossref PubMed Scopus (865) Google Scholar, 10Li QY Newbury-Ecob RA Terrett JA Wilson DI Curtis ARJ Yi CH Gebuhr T Bullen PJ Robson SC Strachan T et al.Holt-Oram syndrome is caused by mutations in TBX5, a member of the Brachyury (T) gene family.Nat Genet. 1997; 15: 21-29Crossref PubMed Scopus (716) Google ScholarTbx2 (GenBank accession number NM_009324), Tbx3 (GenBank accession numbers NM_198052 and NM_011535), and Tbx18 (GenBank accession number NM_023814) are involved in cardiac chamber and inflow-tract development, respectively, in mice,6Stennard FA Harvey RP T-box transcription factors and their roles in regulatory hierarchies in the developing heart.Development. 2005; 132: 4897-4910Crossref PubMed Scopus (125) Google Scholar, 11Christoffels VM Mommersteeg MT Trowe MO Prall OWJ de Gier-de Vries C Soufan AT Bussen M Schuster-Gossler K Harvey RP Moorman AF et al.Formation of the venous pole of the heart from an Nkx2-5-negative precursor population requires Tbx18.Circ Res. 2006; 98: 1555-1563Crossref PubMed Scopus (237) Google Scholar and, although TBX3 (MIM 601620) is mutated in ulnar-mammary syndrome,12Bamshad M Lin RC Law DJ Watkins WS Krakowiak PA Moore ME Franceschini P Lala R Holmes LB Gebuhr TC et al.Mutations in human TBX3 alter limb apocrine and genital development in ulnar-mammary syndrome.Nat Genet. 1997; 16: 311-315Crossref PubMed Scopus (430) Google Scholar these genes have not thus far been implicated in CHD in humans. TBX20 (MIM 606061) is an ancient member of the T-box superfamily related to TBX1, and the expression and function of the Tbx20 gene (GenBank accession number NM_020496) has recently been characterized in a number of models.6Stennard FA Harvey RP T-box transcription factors and their roles in regulatory hierarchies in the developing heart.Development. 2005; 132: 4897-4910Crossref PubMed Scopus (125) Google Scholar, 13Zaffran S Reim I Qian L Lo PC Bodmer R Frasch M Cardioblast-intrinsic Tinman activity controls proper diversification and differention of myocardial cells in Drosophila.Development. 2006; 133: 4073-4083Crossref PubMed Scopus (70) Google Scholar, 14Brown DD Martz SN Binder O Goetz SC Price BMJ Smith J Conlon FL Tbx5 and Tbx20 act synergistically to control vertebrate heart morphogenesis.Development. 2005; 132: 553-563Crossref PubMed Scopus (110) Google Scholar, 15Szeto DP Griffin KJ Kimmelman DK hrT is required for cardiovascular development in zebrafish.Development. 2002; 129: 5093-5101PubMed Google Scholar In mice, Tbx20 is expressed in cardiac progenitor cells, as well as in the developing myocardium and endothelial cells associated with endocardial cushions, the precursor structures for the cardiac valves and the atrioventricular septum.16Stennard FA Costa MW Elliott DA Rankin S Haast SJP Lai D McDonald LPA Niederreither K Dolle P Bruneau BG et al.Cardiac T-box factor Tbx20 directly interacts with Nkx2-5, GATA4 and GATA5 in regulation of gene expression in the developing heart.Dev Biol. 2003; 262: 206-224Crossref PubMed Scopus (223) Google Scholar Tbx20 carries strong transcriptional activation and repression domains, and it physically or genetically interacts with other cardiac developmental transcription factors, including Nkx2-5 (GenBank accession number NM_008700), Gata4 (GenBank accession number DQ436915), Gata5 (GenBank accession number NM_008093), and Tbx5 (GenBank accession number NM_011537).14Brown DD Martz SN Binder O Goetz SC Price BMJ Smith J Conlon FL Tbx5 and Tbx20 act synergistically to control vertebrate heart morphogenesis.Development. 2005; 132: 553-563Crossref PubMed Scopus (110) Google Scholar, 16Stennard FA Costa MW Elliott DA Rankin S Haast SJP Lai D McDonald LPA Niederreither K Dolle P Bruneau BG et al.Cardiac T-box factor Tbx20 directly interacts with Nkx2-5, GATA4 and GATA5 in regulation of gene expression in the developing heart.Dev Biol. 2003; 262: 206-224Crossref PubMed Scopus (223) Google Scholar Loss of Tbx20 in mice is catastrophic for heart development. Homozygous mutants show a rudimentary heart that is poorly proliferative and lacks chamber myocardium and in which expression of the early transcription factor network is compromised.17Stennard FA Costa MW Lai D Biben C Furtado M Solloway MJ McCulley DJ Leimena C Preis JI Dunwoodie SL et al.Murine T-box transcription factor Tbx20 acts as a repressor during heart development, and is essential for adult heart integrity, function and adaptation.Development. 2005; 132: 2451-2462Crossref PubMed Scopus (166) Google Scholar, 18Cai CL Zhou W Yang L Bu L Qyang Y Zhang X Li X Rosenfeld MG Chen J Evans S T-box genes coordinate regional rates of proliferation and regional specification during cardiogenesis.Development. 2005; 132: 2475-2487Crossref PubMed Scopus (174) Google Scholar, 19Singh MK Christoffels VM Dias JM Trowe MO Petry M Schuster-Gossler K Burger A Ericson J Kispert A Tbx20 is essential for cardiac chamber differentiation and repression of Tbx2.Development. 2005; 132: 2697-2707Crossref PubMed Scopus (158) Google Scholar Tbx20 appears to directly repress another T-box gene, Tbx2, which is itself a repressor involved in allocation of chamber and nonchamber myocardium in the early heart tube. A partial knockdown of Tbx20 expression with RNA interference (RNAi) technology20Takeuchi JJ Mileikovskaia M Koshiba-Takeuchi K Heidt AB Mori AD Arruda EP Gertsensein M Georges R Davidson L Mo R et al.Tbx20 dose-dependently regulates transcription factor networks required for mouse heart and motorneuron development.Development. 2005; 132: 2463-2474Crossref PubMed Scopus (177) Google Scholar and analysis of Tbx20 function with use of a chick atrioventricular canal explant system21Shelton EL Yutzey KE Tbx20 regulation of endocardial cushion proliferation and extracellular matrix gene expression.Dev Biol. 2007; 302: 376-388Crossref PubMed Scopus (85) Google Scholar have revealed later functions for Tbx20 in atrioventricular valve development. Adult heterozygous Tbx20-knockout mice show mild atrial septal abnormalities, including an increased prevalence of patent foramen ovale (PFO) and aneurysmal atrial septum primum, as well as mild dilated cardiomyopathy (DCM) and a genetic predisposition to frank ASD.17Stennard FA Costa MW Lai D Biben C Furtado M Solloway MJ McCulley DJ Leimena C Preis JI Dunwoodie SL et al.Murine T-box transcription factor Tbx20 acts as a repressor during heart development, and is essential for adult heart integrity, function and adaptation.Development. 2005; 132: 2451-2462Crossref PubMed Scopus (166) Google Scholar The essential roles of Tbx20 in heart development and adult heart function in mice raise the possibility that mutations in human TBX20 (Ensembl Genome Browser [chromosome 7p14.2] accession number ENSG00000164532) contribute to CHD. We therefore screened 352 CHD-affected probands for TBX20 mutations and found one missense and one nonsense mutation in probands with a family history of CHD. Mutations lay within exons encoding the T-box DNA-binding domain, and we provide structural, functional, and biophysical evidence of their deleterious action. TBX20 mutations were associated with a complex spectrum of developmental and functional abnormalities, including defects in septation, valvulogenesis, and chamber growth and cardiomyopathy. The discovery of CHD mutations in an additional gene functioning in the conserved cardiac regulatory network highlights the importance of this network in development and evolution and as a molecular target in cardiac pathology. Patients with CHD were unrelated individuals recruited without reference to family history during 2000–2006 from St. Vincent’s Hospital, Sydney Children’s Hospital, and The Children’s Hospital at Westmead, Sydney. Clinical evaluation by a cardiologist included medical history, 12-lead electrocardiography and transthoracic echocardiography, and/or transesophageal echocardiography (TEE). Diagnostic categorization of patients with CHD was made according to their most significant structural lesion. For example, a patient with an ASD and a left superior vena cava (SVC) would be categorized as having “ASD with other CHD” (see table 1). A patient with transposition of the great arteries and an ASD would be classified as having “other CHD,” since the transposition may represent more significant pathology. Ethnicity was determined by questionnaire. Informed written consent was obtained from all recruited patients. Study protocols were approved by the human research ethics committees of participating hospitals. The majority of white control individuals were unrelated anonymized individuals for whom atrial and ventricular septal status was undetermined. However, this group also included >100 “TEE controls,” who were unrelated individuals recruited from St. Vincent’s Hospital for whom TEE was performed for a number of indications and for whom ASD, VSD, and PFO were specifically excluded using intravenous saline contrast injection during the strain and release phases of the Valsalva maneuver. Mutation screening was also performed for a supplementary cohort of 90 probands with adult-onset familial DCM from St. Vincent’s Hospital or referred by collaborating physicians.Table 1Patient Cohort DetailsPhenotype(s)ASD OnlyaThree adults had mitral valve prolapse.ASD and Other CHDbIncluding sinus venosus ASD (n=13; all others are secundum ASD); partial anomalous pulmonary venous connection (n=6); left SVC (n=2); valvular lesions (n=5), including one example of supravalvar mitral ring; and coarctation of the aorta (n=1).VSD OnlyVSD and Other CHDcIncluding ASD (n=7), left SVC (n=5), aortic valve abnormalities (n=5), coarctation of the aorta (n=4), double-chambered right ventricle (n=2), pulmonary stenosis (n=1), patent ductus arteriosus (n=1), and partial anomalous venous connection (n=1). One subject had mitral valve prolapse, and one had supravalvar mitral ring.Other CHDdIncluding outflow tract lesions (n=75), atrioventricular septal defect and variants (n=18), functional single ventricle (n=17, including 2 with mitral valve atresia), heterotaxy (n=2), cor triatriatum (n=1), and Ebstein anomaly (n=1).No. of Subjects: Total151244122115 Male5316231070 With positive family historyePositive family history was defined as at least one first-degree relative affected with CHD. Thirty-seven subjects were found to have syndromes known to be associated with CHD, including trisomy 21 (n=20) and 22q microdeletions (n=12). However, only two subjects with a positive family history were from this group.205428 With AV conduction blockfFirst-degree or complete heart block. Complete and partial right bundle-branch block were not included in this group. Two subjects with ASD had left bundle-branch block.53010 With atrial fibrillation80000 With LV dysfunction5gAll subjects were aged >55 years. Subjects had normal LV size and contractility but impaired diastolic relaxation (n=2) or impaired systolic function with (n=2) or without (n=1) LV dilation.1hThis patient (family 2, individual III:4) was positive for TBX20 mutation Q195X.000Mean (range) age at enrollment, in years26 (0–79)12 (.2–62)6 (0–68)6 (0–59)4 (0–16)a Three adults had mitral valve prolapse.b Including sinus venosus ASD (n=13; all others are secundum ASD); partial anomalous pulmonary venous connection (n=6); left SVC (n=2); valvular lesions (n=5), including one example of supravalvar mitral ring; and coarctation of the aorta (n=1).c Including ASD (n=7), left SVC (n=5), aortic valve abnormalities (n=5), coarctation of the aorta (n=4), double-chambered right ventricle (n=2), pulmonary stenosis (n=1), patent ductus arteriosus (n=1), and partial anomalous venous connection (n=1). One subject had mitral valve prolapse, and one had supravalvar mitral ring.d Including outflow tract lesions (n=75), atrioventricular septal defect and variants (n=18), functional single ventricle (n=17, including 2 with mitral valve atresia), heterotaxy (n=2), cor triatriatum (n=1), and Ebstein anomaly (n=1).e Positive family history was defined as at least one first-degree relative affected with CHD. Thirty-seven subjects were found to have syndromes known to be associated with CHD, including trisomy 21 (n=20) and 22q microdeletions (n=12). However, only two subjects with a positive family history were from this group.f First-degree or complete heart block. Complete and partial right bundle-branch block were not included in this group. Two subjects with ASD had left bundle-branch block.g All subjects were aged >55 years. Subjects had normal LV size and contractility but impaired diastolic relaxation (n=2) or impaired systolic function with (n=2) or without (n=1) LV dilation.h This patient (family 2, individual III:4) was positive for TBX20 mutation Q195X. Open table in a new tab TBX20 coding exons were amplified by PCR from 100 ng of leukocyte DNA, were purified with PCR Cleanup Plates (Millipore), and were sequenced using Big Dye Terminator v3.1 kit (Applied Biosystems) and ABI PRISM 3700 DNA Analyzer. Transfection assays and frog-embryo mRNA microinjection assays were performed as described elsewhere,16Stennard FA Costa MW Elliott DA Rankin S Haast SJP Lai D McDonald LPA Niederreither K Dolle P Bruneau BG et al.Cardiac T-box factor Tbx20 directly interacts with Nkx2-5, GATA4 and GATA5 in regulation of gene expression in the developing heart.Dev Biol. 2003; 262: 206-224Crossref PubMed Scopus (223) Google Scholar except that, in the 293T-cell assay exploring Tbx20c function, Tbx20c plasmids were cotransfected with an expression plasmid encoding Sumo-1 (GenBank accession number NM_009460),22Kerscher O Felberbaum R Hochstasser M Modification of proteins by ubiquitin and ubiquitin-like proteins.Annu Rev Cell Dev Biol. 2006; 22: 159-180Crossref PubMed Scopus (1145) Google Scholar which stimulated activity, although it is not known whether Tbx20 itself is sumoylated. Transcription data presented represent experiments performed in triplicate. Statistical analysis was performed using Student’s two-tailed t-test. A homology model of the T-box from mouse Tbx20 bound to DNA was produced using the program SWISS-MODEL, with use of the crystal structure of the T-box from human TBX3 (Protein Data Bank ID 1h6f)23Coll M Seidman JG Muller CW Structure of the DNA-bound T-box domain of human TBX3, a transcription factor responsible for ulnar-mammary syndrome.Structure. 2002; 10: 343-356Abstract Full Text Full Text PDF PubMed Scopus (83) Google Scholar as template. The model structure was not subjected to energy minimization. Graphics were generated using PyMol and Adobe Illustrator CS2. Wild-type (WT) and I152M and Q195X Tbx20 proteins were prepared as glutathione S-transferase (GST) fusion proteins with use of a pGEX-4T-2 protein–expression vector in Escherichia coli BL21 (DE3) Rosetta cells (Novagen and Merck). Protein expression was induced by the addition of 0.4 mM isopropyl β-d-1-thiogalactopyranoside at OD600 of 0.6 and was continued at 22°C for 18 h. Cell pellets were resuspended in 20 mM 3-(N-Morpholino)propane sulphonic acid (MOPS) (pH 7.5), 150 mM NaCl, and 1 mM dithiothreitol (DTT) containing Complete Protease Inhibitors (Roche). Cells were lysed by sonication and then were treated with DNase I (Roche). Cell debris and inclusion bodies removed after centrifugation were solubilized in 8 M urea and were analyzed by SDS PAGE. DNA was precipitated from the lysate supernatant by addition of polyethyleneimine (0.1%), and fusion proteins were purified from the supernatant by affinity chromatography (Glutathione Sepharose 4B [Amersham Biosciences]) according to the manufacturer’s protocols. T-box domains were cleaved from GST on beads with thrombin and were further purified by cation-exchange chromatography on a UnoS.1 column (BioRad) running in 20 mM MOPS (pH 7.5), 1 mM DTT, and 10 μM ZnSO4, with a gradient of NaCl to remove any nucleic acids that remained associated with the protein throughout the affinity purification and cleavage steps. Q195X Tbx20 was unstable and formed inclusion bodies. Circular dichroism (CD) spectropolarimetry data were recorded on a Jasco J-720 spectropolarimeter equipped with a Neslab RTE-111 temperature controller. Far-UV CD spectra were collected at 20°C with a 1-mm cuvette, over the wavelength range 190–250 nm and with a speed of 20 nm/min, resolution of 0.5 nm, band width of 1 nm, and response time of 1 s. Final spectra were the average of three scans, corrected by subtracting a buffer-only spectrum. Protein concentration was estimated from A280, with use of a molar extinction coefficient of 21,430 M−1cm−1 (calculated from sequence data). Melting temperature (MT) was taken as the midpoint in the thermal denaturation curve, determined as the loss in secondary structure in the far-UV CD spectrum. Thermal data were collected at 215 nm, heating from 20°C to 80°C at 1°C per min, with a step size of 0.5°C, band width of 1 nm, and response time of 1 s. Protein concentration was 0.32 mg/ml for the far-UV spectra and 0.57 mg/ml for the thermal melt experiments, in 10 mM sodium phosphate and 150 mM NaF (pH 7.4). The MT was determined by fitting data to a sigmoidal function with use of the nonlinear least-squares fitter in MicroCal Origin. Surface plasmon-resonance analysis was performed on a Biacore 2000 SPR. A biotinylated double-stranded oligonucleotide corresponding to the T-half site16Stennard FA Costa MW Elliott DA Rankin S Haast SJP Lai D McDonald LPA Niederreither K Dolle P Bruneau BG et al.Cardiac T-box factor Tbx20 directly interacts with Nkx2-5, GATA4 and GATA5 in regulation of gene expression in the developing heart.Dev Biol. 2003; 262: 206-224Crossref PubMed Scopus (223) Google Scholar was immobilized on a streptavidin-coated SA sensor chip (Biacore). Single-stranded oligonucleotides (5′-biotin-ctcttataggtgtgaaaaccgtg-3′ and 5′-cacggttttcacacctata-3′) were annealed before binding. The buffer used for all experiments was 50 mM MOPS, 150 mM NaCl, 1 mM DTT, 0.005% P20 surfactant, and 10 μM ZnSO4. The chip was pretreated according to the manufacturer’s instructions, with conditioning solution (3×100 μl injections at 50 μl/min with 50 mM NaOH and 1 M NaCl). Each biotinylated double-stranded oligonucleotide was diluted to 2 nM in 50 mM MOPS (pH 7.4), 500 mM NaCl, 1 mM DTT, 0.005% (v/v) P20 surfactant, and 10 μM ZnSO4 and was injected into one of the sensor-chip channels at a flow rate of 10 μl/min for 10 min, resulting in an immobilization level of ∼600 response units (RUs). The sensor chip was then washed with 50 mM MOPS, 150 mM NaCl, 1 mM DTT, 0.005% P20 surfactant, and 10 μM ZnSO4. Upstream, unmodified channel surfaces were used for reference subtraction. Kinetic measurements were performed at 20°C with a KINJECT protocol and a flow rate of 30 μl/min in the same buffer, with increasing protein concentrations across the range 0.1–10 μM. Ninety microliters of each protein concentration was injected and, at the end of the association phase, was replaced with continuous buffer flow, to monitor dissociation kinetics. WT and mutant protein samples were sampled alternately, zero-concentration samples were included for double referencing, and three cycles were performed. Data analysis was performed with the BIA evaluation software. For one-dimensional 1H nuclear magnetic resonance (NMR) spectra of WT and mutant Tbx20 T-box domains, proteins were prepared at 9.8 mg/ml (WT) and 1.3 mg/ml (I152M) in 50 mM MOPS (pH 7.5), 150 mM NaCl, 1 mM DTT, 10 μM ZnSO4 containing 10% D2O, and 20 μM dimethylsilapentane-5-sulfonic acid. Spectra were acquired at 293 K on a Bruker DRX-600 spectrometer and were processed using Topspin (Bruker). A TBX20 pseudogene covering exons 5 and 6 exists on human chromosome 12. This shows 98.4% homology to cognate regions on chromosome 7. Exon 5 and 6 primers used for mutation screening were specific to TBX20 on chromosome 7. Coding-exon PCR primers are available on request. We screened for mutations in TBX20 coding exons by direct DNA sequencing in 352 probands with CHD, 175 with ASD, 63 with VSD, and 115 with some other form of cardiac structural anomaly (table 1). Probands were recruited without reference to family history of CHD. However, 39 individuals (11%) had at least one first-degree relative with CHD. CHD in most subjects was diagnosed during the newborn period or during early childhood, with 23% diagnosed during adulthood. The majority of subjects were white (76%); the remainder were Asian (including Indian and Pakistani, 11%), Pacific Islander (Polynesian and Melanesian, 6%), Middle Eastern (5%), or Australian Aboriginal (2%). Unique TBX20 mutations within exons encoding the T-box DNA-binding domain were found in two white probands with ASD, each with a positive family history of CHD. Family 1 carried the missense change TBX20 I152M (456C→G) (figs. 1, 2a, and 2b), which segregated with disease over 3 generations. The proband (III:1) had ASD, which was corrected surgically in early childhood. Her grandmother (I:2) had a small VSD, and her mother (II:2) had a large PFO with a permanent left-to-right blood shunt. Cardiac valves and left ventricular (LV) function were normal in all individuals. The I152M change was absent in >450 white controls.Figure 2Structural impact of TBX20 mutations illustrated with a model of the TBX20 T-box (blue ribbon) bound to DNA (gray surface) on the basis of the x-ray crystal structure of the TBX3 domain.23Coll M Seidman JG Muller CW Structure of the DNA-bound T-box domain of human TBX3, a transcription factor responsible for ulnar-mammary syndrome.Structure. 2002; 10: 343-356Abstract Full Text Full Text PDF PubMed Scopus (83) Google Scholara, Space-filling representation of affected residues showing Ile152 (yellow) located in the core of the T-box and Thr209 (green) at the DNA-interaction face. b, Side chain of Ile152, packed within the hydrophobic core. The extra length and possibility of additional rotation within the side chain of methionine may disrupt the hydrophobic packing in this region and destabilize the structure. c, Q195X, which results in truncation of the TBX20 protein within the T-box. The region of the T-box expressed in the Q195X variant is shown in blue, with the remainder of the domain

ABSTRACT The existence of naturally occurring ribosome heterogeneity is now a well-acknowledged phenomenon. However, whether this heterogeneity leads to functionally diverse ‘specialized ribosomes’ is still a controversial topic. Here, we explore the biological function of RPL3L (uL3L), a ribosomal protein (RP) paralog of RPL3 (uL3) that is exclusively expressed in muscle and heart tissues, by generating a viable homozygous Rpl3l knockout mouse strain. We identify a rescue mechanism in which, upon RPL3L depletion, RPL3 becomes upregulated, yielding RPL3-containing ribosomes instead of RPL3L-containing ribosomes that are typically found in cardiomyocytes. Using both ribosome profiling (Ribo-Seq) and a novel orthogonal approach consisting of ribosome pulldown coupled to nanopore sequencing (Nano-TRAP), we find that RPL3L neither modulates translational efficiency nor ribosome affinity towards a specific subset of transcripts. By contrast, we show that depletion of RPL3L leads to increased ribosome-mitochondria interactions in cardiomyocytes, which is accompanied by a significant increase in ATP levels, potentially as a result of mitochondrial activity fine-tuning. Our results demonstrate that the existence of tissue-specific RP paralogs does not necessarily lead to enhanced translation of specific transcripts or modulation of translational output. Instead, we reveal a complex cellular scenario in which RPL3L modulates the expression of RPL3, which in turn affects ribosomal subcellular localization and, ultimately, mitochondrial activity.

Abstract Rationale Gq-coupled receptors are thought to play a critical role in the induction of left ventricular hypertrophy (LVH) secondary to pressure overload, although mechano-sensitive channel activation by a variety of mechanisms has also been proposed, and the relative importance of calcineurin- and calmodulin kinase II (CaMKII)-dependent hypertrophic pathways remains controversial. Objective To determine the mechanisms regulating the induction of LVH in response to mechanical pressure overload. Methods and Results Transgenic mice with cardiac-targeted inhibition of Gq-coupled receptors (GqI mice) and their non-transgenic littermates (NTL) were subjected to neurohumoral stimulation (continuous, subcutaneous angiotensin II (AngII) infusion for 14 days) or mechanical pressure overload (transverse aortic arch constriction (TAC) for 21 days) to induce LVH. Candidate signalling pathway activation was examined. As expected, LVH observed in NTL mice with AngII infusion was attenuated in heterozygous (GqI +/- ) mice and absent in homozygous (GqI -/- ) mice. In contrast, LVH due to TAC was unaltered by either heterozygous or homozygous Gq inhibition. Gene expression of atrial natriuretic peptide (ANP), B-type natriuretic peptide (BNP) and α-skeletal actin (α-SA) was increased 48 hours after AngII infusion or TAC in NTL mice; in GqI mice, the increases in ANP, BNP and α-SA in response to AngII were completely absent, as expected, but all three increased after TAC. Increased nuclear translocation of nuclear factor of activated T-cells c4 (NFATc4), indicating calcineurin pathway activation, occurred in NTL mice with AngII infusion but not TAC, and was prevented in GqI mice infused with AngII. Nuclear and cytoplasmic CaMKIIδ levels increased in both NTL and GqI mice after TAC but not AngII infusion, with increased cytoplasmic phospho- and total histone deacetylase 4 (HDAC4) and increased nuclear myocyte enhancer factor 2 (MEF2) levels. Conclusion Cardiac Gq receptors and calcineurin activation are required for neurohumorally mediated LVH but are not required for LVH induced by mechanical pressure overload (TAC); the latter is mediated by activation of the CaMKII-HDAC4-MEF2 pathway.

Abstract Mechanosensitive channels are integral membrane proteins that sense mechanical stimuli. Like all membrane proteins, they pass through biosynthetic quality control in the endoplasmic reticulum and Golgi that results in them reaching their destination at the plasma membrane. Here we show that N-linked glycosylation of two highly conserved asparagine residues in the ‘cap’ region of mechanosensitive Piezo1 channels are necessary for the mature protein to reach the plasma membrane. Both mutation of these asparagines (N2294Q/N2331Q) and treatment with an enzyme that hydrolyses N-linked oligosaccharides (PNGaseF) eliminates the fully glycosylated mature Piezo1 protein. The N-glycans in the cap are a pre-requisite for higher-order glycosylation in the ‘propeller’ regions, which are present in loops that are essential for mechanotransduction. Importantly, trafficking-defective Piezo1 variants linked to generalized lymphatic dysplasia and bicuspid aortic valve display reduced fully N-glycosylated protein. The higher order glycosylation status in vitro correlates with efficient membrane trafficking and will aid in determining the functional impact of Piezo1 variants of unknown significance.

Purpose To assess the correlation between noninvasive cardiac MRI–derived parameters with pressure-volume (PV) loop data and evaluate changes in left ventricular function after myocardial infarction (MI). Materials and Methods Sixteen adult female swine were induced with MI, with six swine used as controls and 10 receiving platelet-derived growth factor-AB (PDGF-AB). Load-independent measures of cardiac function, including slopes of end-systolic pressure-volume relationship (ESPVR) and preload recruitable stroke work (PRSW), were obtained on day 28 after MI. Cardiac MRI was performed on day 2 and day 28 after infarct. Global longitudinal strain (GLS) and global circumferential strain (GCS) were measured. Ventriculo-arterial coupling (VAC) was derived from PV loop and cardiac MRI data. Pearson correlation analysis was performed. Results GCS (r = 0.60, P = .01), left ventricular ejection fraction (LVEF) (r = 0.60, P = .01), and cardiac MRI–derived VAC (r = 0.61, P = .01) had a significant linear relationship with ESPVR. GCS (r = 0.75, P < .001) had the strongest significant linear relationship with PRSW, followed by LVEF (r = 0.67, P = .005) and cardiac MRI–derived VAC (r = 0.60, P = .01). GLS was not significantly correlated with ESPVR or PRSW. There was a linear correlation (r = 0.82, P < .001) between VAC derived from cardiac MRI and from PV loop data. GCS (−3.5% ± 2.3 vs 0.5% ± 1.4, P = .007) and cardiac MRI–derived VAC (−0.6 ± 0.6 vs 0.3 ± 0.3, P = .001) significantly improved in the animals treated with PDGF-AB 28 days after MI compared with controls. Conclusion Cardiac MRI–derived parameters of MI correlated with invasive PV measures, with GCS showing the strongest correlation. Cardiac MRI–derived measures also demonstrated utility in assessing therapeutic benefit using PDGF-AB. Keywords: Cardiac MRI, Myocardial Infarction, Pressure Volume Loop, Strain Imaging, Ventriculo-arterial Coupling Supplemental material is available for this article. © RSNA, 2024

Abstract Pathological left ventricular hypertrophy (LVH) is a consequence of pressure overload caused by systemic hypertension or aortic stenosis and is a strong predictor of cardiac failure and mortality. Understanding the molecular pathways in the development of pathological LVH may lead to more effective treatment. Here, we show that the transient receptor potential cation channel subfamily melastatin 4 (TRPM4) ion channel is an important contributor to the mechanosensory transduction of pressure overload that induces LVH. In mice with pressure overload induced by transverse aortic constriction (TAC) for two weeks, cardiomyocyte TRPM4 expression was reduced, as compared to control mice. Cardiomyocyte-specific TRPM4 inactivation reduced by ~50% the degree of TAC-induced LVH, as compared with wild type (WT). In WT mice, TAC activated the CaMKIIδ-HDAC4-MEF2A but not the calcineurin-NFAT-GATA4 pathway. In TRPM4 knock-out mice, activation of the CaMKIIδ-HDAC4-MEF2A pathway by TAC was significantly reduced. However, consistent with a reduction in the known inhibitory effect of CaMKIIδ on calcineurin activity, reduction in the CaMKIIδ-HDAC4-MEF2A pathway was associated with partial activation of the calcineurin-NFAT-GATA4 pathway. These findings indicate that the TRPM4 channel and its cognate signalling pathway are potential novel therapeutic targets for the prevention of pathological pressure overload-induced LVH. Significance statement Pathological left ventricular hypertrophy (LVH) occurs in response to pressure overload and remains the single most important clinical predictor of cardiac mortality. Preventing pressure overload LVH is a major goal of therapeutic intervention. Current treatments aim to remove the stimulus for LVH by lowering elevated blood pressure or replacing a stenotic aortic valve. However, neither of these interventions completely reverses adverse cardiac remodelling. Although numerous molecular signalling steps in the induction of LVH have been identified, the initial step by which mechanical stretch associated with cardiac pressure overload is converted into a chemical signal that initiates hypertrophic signalling, remains unresolved. Here, we demonstrate that the TRPM4 channel is a component of the mechanosensory transduction pathway that ultimately leads to LVH.

The interstitial and perivascular spaces of the mammalian heart contain a highly interactive tissue community essential for cardiac homeostasis, repair and regeneration. Mesenchymal cells (fibroblasts) are one of the most abundant cell types, playing key roles as sentinels, tissue architects, paracrine signaling hubs and lineage precursors, and are linked to heart disease through their roles in inflammation and fibrosis. Platelet-derived growth factors (PDGFs) are secreted by several cell types involved in cardiac injury and repair, and are recognized mitogens for cardiac fibroblasts and mesenchymal stem cells. However, their roles are complex and investigations of their impact on heart repair have produced contrasting outcomes, leaving therapeutic potential uncertain. Here, we use new approaches and tools, including single cell RNA sequencing, to explore cardiac fibroblast heterogeneity and how PDGF receptor α (PDGFRα) signaling impacts fibroblasts during heart repair. Short-term systemic delivery of PDGF-AB to mice from the time of myocardial infarction (MI) led to enhanced anatomical and functional recovery. Underpinning these benefits was a priming effect, in which PDGF-AB accelerated exit of fibroblasts from quiescence and induced a higher translational biosynthetic capacity in both fibroblasts and macrophages without triggering fibrosis. Our study highlights the significant biosynthetic heterogeneity and plasticity in cardiac fibroblast populations, and suggests a rationale for a novel therapeutic approach to cardiac injury involving controlled stimulation of fibroblast activation.