JR
José Rodríguez
Author with expertise in Macromolecular Crystallography Techniques
Achievements
Cited Author
Open Access Advocate
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
10
(60% Open Access)
Cited by:
554
h-index:
36
/
i10-index:
52
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
0

Structure of the toxic core of α-synuclein from invisible crystals

José Rodríguez et al.Sep 1, 2015
The protein α-synuclein is the main component of Lewy bodies, the neuron-associated aggregates seen in Parkinson disease and other neurodegenerative pathologies. An 11-residue segment, which we term NACore, appears to be responsible for amyloid formation and cytotoxicity of human α-synuclein. Here we describe crystals of NACore that have dimensions smaller than the wavelength of visible light and thus are invisible by optical microscopy. As the crystals are thousands of times too small for structure determination by synchrotron X-ray diffraction, we use micro-electron diffraction to determine the structure at atomic resolution. The 1.4 Å resolution structure demonstrates that this method can determine previously unknown protein structures and here yields, to our knowledge, the highest resolution achieved by any cryo-electron microscopy method to date. The structure exhibits protofibrils built of pairs of face-to-face β-sheets. X-ray fibre diffraction patterns show the similarity of NACore to toxic fibrils of full-length α-synuclein. The NACore structure, together with that of a second segment, inspires a model for most of the ordered portion of the toxic, full-length α-synuclein fibril, presenting opportunities for the design of inhibitors of α-synuclein fibrils.
0

Low-complexity domains adhere by reversible amyloid-like interactions between kinked β-sheets

Michael Hughes et al.Jun 22, 2017
Abstract Control of metabolism by compartmentation is a widespread feature of higher cells. Recent studies have focused on dynamic intracellular bodies such as stress granules, P-bodies, nucleoli, and metabolic puncta. These bodies appear as separate phases, some containing reversible, amyloid-like fibrils formed by interactions of low-complexity protein domains. Here we report five atomic structures of segments of low-complexity domains from granule-forming proteins, one determined to 1.1 Å resolution by micro-electron diffraction. Four of these interacting protein segments show common characteristics, all in contrast to pathogenic amyloid: kinked peptide backbones, small surface areas of interaction, and predominate attractions between aromatic side-chains. By computationally threading the human proteome on three of our kinked structures, we identified hundreds of low-complexity segments potentially capable of forming such reversible interactions. These segments are found in proteins as diverse as RNA binders, nuclear pore proteins, keratins, and cornified envelope proteins, consistent with the capacity of cells to form a wide variety of dynamic intracellular bodies. One Sentence Summary Atomic structures show transient membraneless organelles of cells formed by a new type of protein interaction akin to pathogenic amyloid fibrils.
0
Citation5
0
Save
0

Atomic structures determined from digitally defined nanocrystalline regions

Marcus Gallagher-Jones et al.Oct 29, 2019
Nanocrystallography has transformed our ability to interrogate the atomic structures of proteins, peptides, organic molecules and materials. By probing atomic level details in ordered sub-10 nm regions of nanocrystals, approaches in scanning nanobeam electron diffraction extend the reach of nanocrystallography and mitigate the need for diffraction from large portions of one or more crystals. We now apply scanning nanobeam electron diffraction to determine atomic structures from digitally defined regions of beam-sensitive peptide nanocrystals. Using a direct electron detector, we record thousands of sparse diffraction patterns over multiple crystal orientations. We assign each pattern to a specific location on a single nanocrystal with axial, lateral and angular coordinates. This approach yields a collection of patterns that represent a tilt series across an angular wedge of reciprocal space: a scanning nanobeam diffraction tomogram. From this diffraction tomogram, we can digitally extract intensities from any desired region of a scan in real or diffraction space, exclusive of all other scanned points. Intensities from multiple regions of a crystal or from multiple crystals can be merged to increase data completeness and mitigate missing wedges. Merged intensities from digitally defined regions of two crystals of a segment from the OsPYL/RCAR5 protein produce fragment-based ab-initio solutions that can be refined to atomic resolution, analogous to structures determined by selected area electron diffraction. In allowing atomic structures to now be determined from digitally outlined regions of a nanocrystal, scanning nanobeam diffraction tomography breaks new ground in nanocrystallography.
1

Cryo-EM Structure of a Human LECT2 Amyloid Fibril Reveals a Network of Polar Ladders at its Core

Logan Richards et al.Feb 11, 2023
ALECT2 is a type of systemic amyloidosis caused by deposition of the leukocyte cell-derived chemotaxin-2 (LECT2) protein in the form of fibrils. In ALECT2, LECT2 fibril deposits can be found in the glomerulus, resulting in renal failure. Affected patients lack effective treatment options outside of renal transplant or dialysis. While the structure of LECT2 in its globular form has been determined by X-ray crystallography, structures of LECT2 amyloid fibrils remain unknown. Using single particle cryo-EM, we now find that human LECT2 forms robust twisting fibrils with canonical amyloid features. At their core, LECT2 fibrils contain two mating protofilaments, the ordered core of each protofilament spans residues 55-75 of the LECT2 sequence. The overall geometry of the LECT2 fibril displays features in line with other pathogenic amyloids. Its core is tightly packed and stabilized by a network of hydrophobic contacts and hydrogen-bonded uncharged polar residues, while its outer surface displays several charged residues. The robustness of LECT2 fibril cores is illustrated by their limited dissolution in 3M urea and their persistence after treatment with proteinase K. As such, the LECT2 fibril structure presents a potential new target for treatments against ALECT2.