Abstract Gut-associated microbial communities are known to play a vital role in the health and fitness of their hosts. Though studies investigating the factors associated with among-individual variation in microbiome structure in wild animal species are increasing, knowledge of this variation at the individual level is scarce, despite the clear link between microbiome and nutritional status uncovered in humans and model organisms. Here, we combine detailed life history, foraging preference, and faecal microbiome data to investigate the relationship between diet, microbiome stability and rates of body mass gain in a migratory capital-breeding bird, the light-bellied Brent goose ( Branta bernicla hrota) . Our findings suggest that there is a significant relationship between foraging and the diversity, composition and stability of the faecal microbiome. We also suggest a link between foraging phenotype and the rates of mass gain during the spring staging of a capital breeder. This study offers rare insight into individual-level temporal dynamics of the gut microbiome of a wild host. Further work is needed to uncover the functional link between individual dietary choices, gut microbiome structure and stability, and the implications this has for the reproductive success of this capital breeder.

Environmental heterogeneity is known to modulate the interactions between pathogens and hosts. However, the impact of environmental heterogeneity on the structure of host-associated microbial communities, and how these communities respond to pathogenic exposure remain poorly understood. Here we use an experimental framework to probe the links between environmental heterogeneity, skin microbiome structure and infection by the emerging pathogen Ranavirus in a vertebrate host, the European common frog (Rana temporaria). We provide evidence that environmental complexity directly influences the diversity and structure of the host skin microbiome, and that more diverse microbiomes are more resistant to perturbation associated with exposure to Ranavirus. Our data also indicate that host microbiome diversity covaries with survival following exposure to Ranavirus. Our study highlights the importance of extrinsic factors in driving host-pathogen dynamics in vertebrate hosts, and suggests that environment-mediated variation in the structure of the host microbiome may covary with observed differences in host susceptibility to disease in the wild.

The emerging fungal pathogen, Batrachochytrium salamandrivorans (Bsal) is responsible for the catastrophic decline of European salamanders and poses a threat to amphibians globally. The amphibian skin microbiome is strongly associated with disease outcome for several host-pathogen systems, yet its role in Bsal infection remains unresolved. In addition, many in-vivo Bsal studies to date have relied on specimens that have been kept in captivity for long periods without considering the influence of environment on the microbiome and how this may impact the host response to pathogen exposure. We characterised the impact of captivity and exposure to Bsal on the skin bacterial and fungal communities of two co-occurring European newt species, the smooth newt (Lissotriton vulgaris) and the great-crested newt (Triturus cristatus). Bsal infection and subsequent mortality in both newt species was associated with perturbation of the skin microbiome and possible dysbiosis. In addition, reduced microbial diversity and changes in microbiome structure accompanied the transition of newts from the wild to captivity, suggesting a possible decline in microbe-associated protection and increased risk of infection by opportunistic pathogens. Our findings advance current understanding of the role of host-associated microbiota in Bsal infection and highlight important considerations for ex-situ amphibian conservation programmes.

Abstract Genetically-defined biodiversity units must align with practical conservation frameworks, and most conservation is conducted at the species level. Chinese giant salamanders have traditionally been interpreted as the single widespread species Andrias davidianus, but molecular studies have reinterpreted this taxon as representing multiple allopatric clades, and competing taxonomic hypotheses support different numbers of candidate species. We conducted species delimitation analyses using tree-based models (General Mixed Yule Coalescent, Poisson Tree Processes) and alignment-based models (Bayesian Phylogenetics and Phylogeography) to interpret diversification across Andrias within a comparative systematic framework, using 30 mitogenomes representing all recognised Chinese clades. Nearly all tested models provide support for at least seven statistically-resolved Chinese species-level lineages, and most provide support for nine species. Only four species have available names. Chinese Andrias populations are Critically Endangered, but unnamed species cannot be incorporated into national or international conservation frameworks and risk being excluded from recovery efforts. We urge taxonomists and conservation practitioners to focus more attention on the world’s largest amphibians, and non-standard taxonomic approaches may be required to name these species before they disappear.

Social environments influence multiple traits of individuals including immunity, stress and ageing, often in sex-specific ways. The composition of the microbiome (the assemblage of symbiotic microorganisms within a host) is determined by environmental factors and the host's immune, endocrine and neural systems. The social environment could alter host microbiomes extrinsically by affecting transmission between individuals, likely promoting homogeneity in the microbiome of social partners. Alternatively, intrinsic effects arising from interactions between the microbiome and host physiology (the microbiota-gut-brain axis) could translate social stress into dysbiotic microbiomes, with consequences for host health. We investigated how manipulating social environments during larval and adult life-stages altered the microbiome composition of Drosophila melanogaster fruit flies. We used social contexts that particularly alter the development and lifespan of males, predicting that any intrinsic social effects on the microbiome would therefore be sex-specific. The presence of adult males during the larval stage significantly altered the microbiome of pupae of both sexes. In adults, same-sex grouping increased bacterial diversity in both sexes. Importantly, the microbiome community structure of males was more sensitive to social contact at older ages, an effect partially mitigated by housing focal males with young rather than co-aged groups. Functional analyses suggest that these microbiome changes impact ageing and immune responses. This is consistent with the hypothesis that the substantial effects of the social environment on individual health are mediated through intrinsic effects on the microbiome, and provides a model for understanding the mechanistic basis of the microbiota-gut-brain axis.