ABSTRACT Parkinson’s disease (PD) is a common incurable neurodegenerative disease. The identification of genetic variants via genome-wide association studies (GWAS) has considerably advanced our understanding of the PD genetic risk. Understanding the functional significance of the risk loci is now a critical step towards translating these genetic advances into an enhanced biological understanding of the disease. Impaired mitophagy is a key causative pathway in familial PD, but its relevance to idiopathic PD is unclear. We used a mitophagy screening assay to evaluate the functional significance of risk genes identified through GWAS. We identified two new regulators of PINK1-mitophagy, KAT8 and KANSL1, previously shown to modulate lysine acetylation. We show that KAT8 and KANSL1 modulate PINK1 gene expression and subsequent PINK1-mitophagy. These findings suggest PINK1-mitophagy is a contributing factor to idiopathic PD. KANSL1 is located on chromosome 17q21 where the risk associated gene has long been considered to be MAPT . While our data does not exclude a possible association between the MAPT gene and PD, it provides strong evidence that KANSL1 plays a crucial role in the disease. Finally, these results enrich our understanding of physiological events regulating mitophagy and establish a novel pathway for drug targeting in neurodegeneration.

Mitochondrial Rho (Miro) GTPases localize to the outer mitochondrial membrane and are essential machinery for the regulated trafficking of mitochondria to defined subcellular locations. However, their sub-mitochondrial localization and relationship with other critical mitochondrial complexes remains poorly understood. Here, using super-resolution fluorescence microscopy, we report that Miro proteins form nanometer-sized clusters along the mitochondrial outer membrane in association with the Mitochondrial Contact Site and Cristae Organizing System (MICOS). Using knockout mouse embryonic fibroblasts (MEF) we show that Miro1 and Miro2 are required for normal mitochondrial cristae architecture and endoplasmic reticulum-mitochondria contacts sites (ERMCS). Further, we show that Miro couples MICOS to TRAK motor protein adaptors to ensure the concerted transport of the two mitochondrial membranes and the correct distribution of cristae on the mitochondrial membrane. The Miro nanoscale organization, association with MICOS complex and regulation of ERMCS reveal new levels of control of the Miro GTPases on mitochondrial functionality.

Abstract Mutations in the SNCA gene cause autosomal dominant Parkinson’s disease (PD), with progressive loss of dopaminergic neurons in the substantia nigra, and accumulation of aggregates of α-synuclein. However, the sequence of molecular events that proceed from the SNCA mutation during development, to its end stage pathology is unknown. Utilising human induced pluripotent stem cells (hiPSCs) with SNCA mutations, we resolved the temporal sequence of pathophysiological events that occur during neuronal differentiation in order to discover the early, and likely causative, events in synucleinopathies. We adapted a small molecule-based protocol that generates highly enriched midbrain dopaminergic (mDA) neurons (>80%). We characterised their molecular identity using single-cell RNA sequencing and their functional identity through the synthesis and secretion of dopamine, the ability to generate action potentials, and form functional synapses and networks. RNA velocity analyses confirmed the developmental transcriptomic trajectory of midbrain neural precursors into mDA neurons using our approach, and identified key driver genes in mDA neuronal development. To characterise the synucleinopathy, we adopted super-resolution methods to determine the number, size and structure of aggregates in SNCA -mutant mDA neurons. At one week of differentiation, prior to maturation to mDA neurons of molecular and functional identity, we demonstrate the formation of small aggregates; specifically, β-sheet rich oligomeric aggregates, in SNCA -mutant midbrain immature neurons. The aggregation progresses over time to accumulate phosphorylated aggregates, and later fibrillar aggregates. When the midbrain neurons were functional, we observed evidence of impaired physiological calcium signalling, with raised basal calcium, and impairments in cytosolic and mitochondrial calcium efflux. Once midbrain identity fully developed, SNCA -mutant neurons exhibited bioenergetic impairments, mitochondrial dysfunction and oxidative stress. During the maturation of mDA neurons, upregulation of mitophagy and autophagy occured, and ultimately these multiple cellular stresses lead to an increase in cell death by six weeks post-differentiation. Our differentiation paradigm generates an efficient model for studying disease mechanisms in PD, and highlights that protein misfolding to generate intraneuronal oligomers is one of the earliest critical events driving disease in human neurons, rather than a late-stage hallmark of the disease.

Abstract The development of human induced pluripotent stem cells (hiPSC) has greatly aided our ability to model neurodegenerative diseases. However, generation of midbrain dopaminergic (mDA) neurons is a major challenge and protocols are variable. Here, we developed a method to differentiate hiPSCs into enriched populations (>80%) of mDA neurons using only small molecules. We confirmed the identity of the mDA neurons using single-cell RNA-sequencing and detection of classical markers. Single-cell live imaging demonstrated neuronal calcium signalling and functional dopamine transport. Electrophysiology measures highlighted the ability to form synapses and networks in culture. Patient-specific hiPSC lines differentiated to produce functional mDA neurons that exhibit the hallmarks of synucleinopathy including: aggregate formation, oxidative stress as well as mitochondrial dysfunction and impaired lysosomal dynamics. In summary, we establish a robust differentiation paradigm to generate enriched mDA neurons from hiPSCs, which can be used to faithfully model key aspects of Parkinson’s disease (PD), providing the potential to further elucidate molecular mechanisms contributing to disease development.