MV
Michiel Vermeulen
Author with expertise in Regulation of Chromatin Structure and Function
Achievements
Cited Author
Open Access Advocate
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
52
(63% Open Access)
Cited by:
8,133
h-index:
64
/
i10-index:
140
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
0

Quantitative Phosphoproteomics Reveals Widespread Full Phosphorylation Site Occupancy During Mitosis

Jesper Olsen et al.Jan 12, 2010
Eukaryotic cells replicate by a complex series of evolutionarily conserved events that are tightly regulated at defined stages of the cell division cycle. Progression through this cycle involves a large number of dedicated protein complexes and signaling pathways, and deregulation of this process is implicated in tumorigenesis. We applied high-resolution mass spectrometry-based proteomics to investigate the proteome and phosphoproteome of the human cell cycle on a global scale and quantified 6027 proteins and 20,443 unique phosphorylation sites and their dynamics. Co-regulated proteins and phosphorylation sites were grouped according to their cell cycle kinetics and compared to publicly available messenger RNA microarray data. Most detected phosphorylation sites and more than 20% of all quantified proteins showed substantial regulation, mainly in mitotic cells. Kinase-motif analysis revealed global activation during S phase of the DNA damage response network, which was mediated by phosphorylation by ATM or ATR or DNA-dependent protein kinases. We determined site-specific stoichiometry of more than 5000 sites and found that most of the up-regulated sites phosphorylated by cyclin-dependent kinase 1 (CDK1) or CDK2 were almost fully phosphorylated in mitotic cells. In particular, nuclear proteins and proteins involved in regulating metabolic processes have high phosphorylation site occupancy in mitosis. This suggests that these proteins may be inactivated by phosphorylation in mitotic cells.
0
Paper
Citation1,444
0
Save
0

Proteome-wide identification of ubiquitin interactions using UbIA-MS

Xiao-Fei Zhang et al.Feb 15, 2018
This protocol describes the chemical synthesis of different nonhydrolyzable diubiquitin linkages and their use in affinity purification and LC–MS/MS identification of linkage-selective diubiquitin interactors. Ubiquitin-binding proteins play an important role in eukaryotes by translating differently linked polyubiquitin chains into proper cellular responses. Current knowledge about ubiquitin-binding proteins and ubiquitin linkage-selective interactions is mostly based on case-by-case studies. We have recently reported a method called ubiquitin interactor affinity enrichment–mass spectrometry (UbIA-MS), which enables comprehensive identification of ubiquitin interactors for all ubiquitin linkages from crude cell lysates. One major strength of UbIA-MS is the fact that ubiquitin interactors are enriched from crude cell lysates, in which proteins are present at endogenous levels, contain biologically relevant post-translational modifications (PTMs) and are assembled in native protein complexes. In addition, UbIA-MS uses chemically synthesized nonhydrolyzable diubiquitin, which mimics native diubiquitin and is inert to cleavage by endogenous deubiquitinases (DUBs). Here, we present a detailed protocol for UbIA-MS that proceeds in five stages: (i) chemical synthesis of ubiquitin precursors and click chemistry for the generation of biotinylated nonhydrolyzable diubiquitin baits, (ii) in vitro affinity purification of ubiquitin interactors, (iii) on-bead interactor digestion, (iv) liquid chromatography (LC)–MS/MS analysis and (v) data analysis to identify differentially enriched proteins. The computational analysis tools are freely available as an open-source R software package, including a graphical interface. Typically, UbIA-MS allows the identification of dozens to hundreds of ubiquitin interactors from any type of cell lysate, and can be used to study cell type or stimulus-dependent ubiquitin interactions. The nonhydrolyzable diubiquitin synthesis can be completed in 3 weeks, followed by ubiquitin interactor enrichment and identification, which can be completed within another 2 weeks.
0

SMYD3 links lysine methylation of MAP3K2 to Ras-driven cancer

Paweł Mazur et al.May 21, 2014
SMYD3 is a methyltransferase overexpressed in several human tumours; here methylation of the MAP3K2 kinase by SMYD3 is shown to be critical for Ras-induced tumour development in mouse models and human tumour cells, showing an unexpected role for methylation in a kinase signalling pathway and revealing a candidate therapeutic target. SMYD3 is a largely cytoplasmic lysine methyltransferase that is overexpressed in several human tumours. This paper reports that SMYD3 is required for Ras-induced tumour development in mouse models. The enzyme methylates MAP3K2, which inhibits binding of a phosphatase and potentiates the Ras/Raf signalling pathway. These results reveal an unexpected role for lysine methylation in a kinase signalling pathway and establish SMYD3 as a potential therapeutic target. Deregulation of lysine methylation signalling has emerged as a common aetiological factor in cancer pathogenesis, with inhibitors of several histone lysine methyltransferases (KMTs) being developed as chemotherapeutics1. The largely cytoplasmic KMT SMYD3 (SET and MYND domain containing protein 3) is overexpressed in numerous human tumours2,3,4. However, the molecular mechanism by which SMYD3 regulates cancer pathways and its relationship to tumorigenesis in vivo are largely unknown. Here we show that methylation of MAP3K2 by SMYD3 increases MAP kinase signalling and promotes the formation of Ras-driven carcinomas. Using mouse models for pancreatic ductal adenocarcinoma and lung adenocarcinoma, we found that abrogating SMYD3 catalytic activity inhibits tumour development in response to oncogenic Ras. We used protein array technology to identify the MAP3K2 kinase as a target of SMYD3. In cancer cell lines, SMYD3-mediated methylation of MAP3K2 at lysine 260 potentiates activation of the Ras/Raf/MEK/ERK signalling module and SMYD3 depletion synergizes with a MEK inhibitor to block Ras-driven tumorigenesis. Finally, the PP2A phosphatase complex, a key negative regulator of the MAP kinase pathway, binds to MAP3K2 and this interaction is blocked by methylation. Together, our results elucidate a new role for lysine methylation in integrating cytoplasmic kinase-signalling cascades and establish a pivotal role for SMYD3 in the regulation of oncogenic Ras signalling.
0
Citation362
0
Save
Load More