ABSTRACT SARS-CoV-2 entry is mediated by binding of the spike protein (S) to the surface receptor ACE2 and subsequent priming by TMPRRS2 allowing membrane fusion. Here, we produced extracellular vesicles (EVs) exposing ACE2 and demonstrate that ACE2-EVs are efficient decoys for SARS-CoV-2 S protein-containing lentivirus. Reduction of infectivity positively correlates with the level of ACE2, is 500 to 1500 times more efficient than with soluble ACE2 and further enhanced by the inclusion of TMPRSS2.

Abstract Nogo-A is a well-characterized myelin-associated membrane protein that restricts fibre growth and the regenerative capacity of the adult central nervous system after injury. To date Nogo-A post-receptor signalling pathway research focused on the RhoA/ROCK cascade, which can lead to growth cone collapse and neurite retraction. Much less is known about continued intracellular Nogo-A signalling mediating long-term neurite outgrowth inhibition resulting from transcriptional and translational changes. Here, we propose a simple but highly reproducible in vitro assay to study Nogo-A related signaling and neurite outgrowth inhibition in general. Furthermore, we identified ERK1/2 as downstream effector of Nogo-A, partially mediating its neurite outgrowth inhibition. We describe ERK1/2 dependent changes of translational events such as elevation of RhoA levels within the growth cone, which may potentiate the cells’ responses to Nogo-A. We also observed Nogo-A dependent upregulation of the JAK/STAT pathway inhibitors SOCS3 and KLF4 and downregulation of insulin mediated phosphorylation of AKT, indicating direct negative crosstalk between Nogo-A signalling and the growth promoting JAK/STAT and AKT/mTORC1 pathways.

Abstract Progressive Tau deposition in neurofibrillary tangles and neuropil threads is the hallmark of tauopathies, a disorder group that includes Alzheimer’s disease. Since Tau is a microtubule-associated protein, a prevalent concept to explain the pathogenesis of tauopathies is that abnormal Tau modification contributes to dissociation from microtubules, assembly into multimeric β-sheets, proteotoxicity, neuronal dysfunction and cell loss. Tau also localizes in the cell nucleus and evidence supports an emerging function of Tau in DNA stability and epigenetic modulation. To better characterize the possible role of Tau in regulation of chromatin compaction and subsequent gene expression, we performed a bioinformatics analysis of transcriptome data obtained from Tau-depleted human neuroblastoma cells. Among the transcripts deregulated in a Tau-dependent manner, we found an enrichment of target genes for the polycomb repressive complex 2. We further describe decreased cellular amounts of the core components of the polycomb repressive complex 2 complex and a lower histone 3 trimethylation activity in Tau deficient cells. Among the de-repressed polycomb repressive complex 2 target gene products, IGFBP3 protein was found to be linked to increased senescence induction in Tau-deficient cells. Our findings propose a mechanism for Tau-dependent epigenetic modulation of cell senescence, a key event in pathologic aging.

Abstract A slow decline in the autophagy-lysosomal pathway is a hallmark of the normal aging brain. Yet, an acceleration of this cellular function may propel neurodegenerative events. In fact, mutations in genes associated with the autophagy-lysosomal pathway can lead to Parkinson’s disease. Also, amyloidogenic protein deposition is observed in lysosomal storage disorders, which are caused by genetic mutations representing risk factors for Parkinson’s disease. For example, Gaucher’s disease GBA1 mutations leading to defects in lysosomal sphingolipid metabolism cause α-synuclein accumulation. We observed that increased lysosomal Tau accumulation is found in human dermal fibroblasts engineered for inducible Tau expression. Inhibition of the GBA1 product GCase augmented Tau-dependent lysosomal stress and Tau accumulation. Here, we show increased Tau seed-induced Tau accumulation in Gaucher’s fibroblasts carrying GBA1 mutations when compared to normal fibroblasts. Pharmacological enhancement of GCase reversed this effect, notably, also in normal fibroblasts. This suggests that boosting GCase activity may represent a therapeutic strategy to slow down aging-dependent lysosomal deficits and brain protein deposition.

ABSTRACT Cell-cell communication within the complex tumor microenvironment is critical to cancer progression. Tumor-derived extracellular vesicles (TD-EVs) are key players in this process. They can interact with immune cells and modulate their activity, either suppressing or activating the immune system. Understanding the interactions between TD-EVs and immune cells is essential for understanding immune modulation by cancer cells. Fluorescent labelling of TD-EVs is a method of choice to study such interaction. This work aims to determine the impact of EV labelling methods on the detection of EV interaction and capture by the different immune cell types within human Peripheral Blood Mononuclear Cells (PBMCs), analyzed by imaging flow cytometry and multicolor spectral flow cytometry. EVs released by the triple-negative breast carcinoma cell line MDA-MB-231 were labeled either with the lipophilic dye MemGlow-488 (MG-488), with Carboxyfluorescein diacetate, succinimidyl ester (CFDA-SE), or through expression of a MyrPalm-superFolder GFP (sfGFP) that incorporates into EVs during their biogenesis using a genetically engineered cell line. Our results showed that these different labeling strategies, although analyzed with the same techniques, led to diverging results. While MG-488-labelled EVs incorporate in all cell types, CFSE-labelled EVs are restricted to a minor subset of cells and sfGFP-labelled EVs are mainly detected in CD14+ monocytes which are the main uptakers of EVs and other particles, regardless of the labeling method. Moreover, MG-488-labeled liposomes behaved similarly to MG-488 EVs, highlighting the predominant role of the labelling strategy on the visualization and analysis of TD-EVs uptake by immune cell types. Consequently, the use of different EV labeling methods has to be considered as they can provide complementary information on various types of EV-cell interaction and EV fate.