Abstract Hematopoietic stem cells (HSCs) produce a highly diverse array of cell lineages. To assay hematopoietic differentiation with minimal experimental perturbation, non-invasive methods for heritable labeling 1–3 or barcoding 4–7 of HSCs in vivo have recently been developed and used to study lineage fate of HSCs in physiological conditions. However, the differentiation pathways leading from HSCs to mature cells remain controversial 8 , with suggested models ranging from gradual lineage restriction in a branching cascade of progenitors to HSCs already making ultimate lineage decisions. Here we show, by iterating HSC fate-mapping, mitotic history tracking, single-cell RNA-sequencing and computational inference, that the major differentiation routes to megakaryocytes, erythro-myeloid cells and lymphocytes split within HSCs. We identify the hitherto elusive self-renewing source of physiological hematopoiesis as an HSC subpopulation co-expressing high levels of Sca-1 and CD201. Downstream, HSCs reduce Sca-1 expression and enter into either thrombopoiesis or erythro-myelopoiesis, or retain high Sca-1 levels and the ability to generate lymphocytes. Moreover, we show that a distinct population of CD48 −/lo megakaryocyte progenitors links HSCs to megakaryocytes. This direct thrombopoiesis pathway is independent of the classical pathway of megakaryocyte differentiation via multipotent progenitors and becomes the dominant platelet production line upon enhanced thrombopoietin signaling. Our results define a hierarchy of self-renewal and lineage decisions within HSCs in native hematopoiesis. Methodologically, we provide a blueprint for mapping physiological differentiation pathways of stem cells and probing their regulation.

Abstract Macrophages populate every organ during homeostasis and disease, displaying features of tissue imprinting and heterogeneous activation. The disjointed picture of macrophage biology that emerged from these observations are a barrier for integration across models or with in vitro macrophage activation paradigms. We set out to contextualize macrophage heterogeneity across mouse tissues and inflammatory conditions, specifically aiming to define a common framework of macrophage activation. We built a predictive model with which we mapped the activation of macrophages across 12 tissues and 25 biological conditions, finding a striking commonality and finite number of transcriptional profiles, which we modelled as defined stages along four conserved activation paths. We verified this model with adoptive cell transfer experiments and identified transient RELMɑ expression as a feature of macrophage tissue engraftment. We propose that this integrative approach of macrophage classification allows the establishment of a common predictive framework of macrophage activation in inflammation and homeostasis. One Sentence Summary We propose an integrative approach of macrophage classification that allows the establishment of a common framework of macrophage activation in inflammation and homeostasis.

Abstract Defects in nucleic acid metabolizing enzymes lead to spontaneous but selective activation of either cGAS/STING or RIG-like receptor (RLR) signaling, causing a pathogenic type I interferon response and inflammatory diseases. In these pathophysiological conditions, cGAS-driven IFN production is linked to spontaneous DNA damage. Physiological, or tonic, IFN signaling on the other hand is essential to functionally prime nucleic acid sensing pathways. Here we show that low-level chronic DNA damage in mice lacking the Aicardi-Goutières syndrome gene SAMHD1 reduced tumor-free survival when crossed to a p53-deficient, but not to DNA mismatch repair-deficient background. Increased DNA damage did not result in higher levels of type I interferon. Instead, we found that the chronic interferon response in SAMHD1-deficient mice was driven by the MDA5/MAVS pathway but required functional priming through the cGAS/STING pathway. Our work positions cGAS/STING upstream of tonic IFN signaling and highlights an important role of the pathway in physiological and pathophysiological innate immune priming. Summary Loss of the dNTPase and DNA repair enzyme SAMHD1 is associated with cancer and causes systemic autoimmunity. We show transformation-promoting spontaneous DNA damage and MDA5-driven but cGAS/STING-dependent chronic type I interferon production in SAMHD1-deficient mice.

The proliferative activity of adult hematopoietic stem cells (HSCs) is controversially discussed. Inducible fluorescent histone 2B fusion protein (H2B-FP) transgenic mice are important tools for tracking the mitotic history of murine HSCs in label dilution experiments. A recent study proposed that the most primitive HSCs divide only four times, to then enter permanent quiescence. We observed that background fluorescence due to leaky H2B-FP expression, occurring in all H2B-FP transgenes independent of label induction, accumulated with age in primitive HSCs with high repopulation potential. We argue that this background had been misinterpreted as retention of induced label and permanent quiescence. We found cell division-independent half-lives of H2B-FPs to be short, which had led to overestimation of HSC divisional activity. Our data do not support HSC mitotic memory and entry into permanent quiescence after few divisions, but show that primitive HSCs of adult mice continue to cycle rarely.

Abstract A subpopulation of deeply quiescent, so-called dormant hematopoietic stem cells (dHSCs) resides at the top of the hematopoietic hierarchy and serves as a reserve pool for HSCs possessing the greatest long-term blood repopulation capacity. The state of dormancy protects the HSC pool from exhaustion throughout life, however excessive dormancy may block an efficient response to hematological stresses. The mechanisms of HSC dormancy remain elusive, mainly due to the absence of surface markers that allow dHSC prompt isolation. Here, we identify CD38 as a novel surface marker for murine dHSCs that is broadly applicable. Moreover, we demonstrate that cyclic adenosine diphosphate ribose (cADPR), the product of CD38 cyclase activity, regulates the expression of the transcription factor c-Fos by increasing cytoplasmic Ca 2+ concentration. Strikingly, we uncover that c-Fos drives HSCs dormancy through the induction of the cell cycle inhibitor p57 Kip2 . Moreover, we found that CD38 ecto-enzymatic activity at the neighboring CD38-positive cells can promote human HSC quiescence. Together, CD38/cADPR/Ca 2+ /cFos/p57 Kip2 axis maintains HSC dormancy. Pharmacological manipulations of this pathway can provide new strategies to expand dHSCs for transplantation or to activate them during hematological stresses.

Summary Hematopoietic stem cells (HSCs) are the ultimate source of blood and immune cells. Under homeostatic conditions, these cells are considered a quiescent reserve population. However, it is not clear to what extent HSCs participate in emergency responses. Herein, we use fate mapping and proliferation tracking mouse models, which cumulatively record HSC activity in situ . We observed no direct contribution of HSCs to mature blood cell regeneration in response to common hematopoietic emergencies, including inflammation or blood loss. Innate immune training, in which HSCs were proposed to store and integrate information on previous infections, did not alter HSC activity upon secondary exposure. Only severe myeloablation resulted in a robust increase of HSC contribution. Our data demonstrates that HSCs do not directly participate in the regeneration of mature blood cells and therefore do not represent a reserve population to compensate for physiological hematopoietic perturbations.

Hematopoietic stem cells (HSCs) continuously replenish all blood cell types through a series of differentiation steps that involve the generation of lineage-committed progenitors as well as necessary expansion due to repeated cell divisions. However, whether cell division in HSCs precedes differentiation is unclear. To this end, we used an HSC cell tracing approach and Ki67RFP knock-in mice to assess simultaneously divisional history, cell cycle progression, and differentiation of adult HSCs in vivo. Our results reveal that HSCs are able to differentiate into restricted progenitors, especially common myeloid progenitors, restricted megakaryocyte-erythroid progenitors (PreMEs) and pre-megakaryocyte progenitors (PreMegs), without undergoing cell division and even before entering the S phase of the cell cycle. Additionally, the phenotype of the undivided but differentiated progenitors correlated with expression of lineage-specific genes that manifested as functional differences between HSCs and restricted progenitors. Thus, HSC fate decisions appear to be uncoupled from physical cell division. These results facilitate a better understanding of the mechanisms that control fate decisions in hematopoietic cells. Our data, together with separate findings from embryonic stem cells, suggest that cell division and fate choice are independent processes in pluripotent and multipotent stem cells.

Abstract Cell-intrinsic response patterns control risks arising from genome-damage, preventing malignant transformation. The DNA sensor cyclic-GMP-AMP synthase (cGAS) has emerged as a new principle detecting genome damage, as it can be triggered by aberrant self-DNA. Stimulator of interferon genes (STING)-activation downstream of cGAS can drive cells into senescence or cell death and induces antiproliferative type I interferon (IFN) and pro-apoptotic tumor necrosis factor responses. Herein, we investigated how DNA damage-driven activation of cGAS/STING signaling impacts on hematopoiesis. Defective ribonucleotide excision repair (RER) in the hematopoietic system caused chromosomal instability as well as robust activation of the cGAS/STING/IFN axis, and compromised hematopoietic stem cell function, resulting in cytopenia and ultimately leukemia. Whereas loss of p53 largely rescued RER-deficient hematopoiesis at the cost of further accelerated leukemogenesis, the additional inactivation of cGAS, STING or type I IFN signaling had no detectable effect on blood cell generation and leukemia development. Moreover, cGAS-deficient hematopoiesis showed unaltered responses to spontaneous or acute DNA damage. Our data demonstrate that the cGAS/STING pathway is dispensable for the hematopoietic system coping with chronic or acute DNA damage and does not protect against leukemic transformation in the absence of RER.