Abstract Adipose tissue plasticity is orchestrated by molecularly and functionally diverse cells within the stromal vascular fraction (SVF). While several mouse and human adipose SVF cellular subpopulations have now been identified, we still lack an understanding of the cellular and functional variability of adipose stem and progenitor cell (ASPC) populations across human fat depots. To address this, we performed single-cell and bulk RNA-seq analyses of >30 Lin–SVF samples across four human adipose depots, revealing two ubiquitous hASPC subpopulations with distinct proliferative and adipogenic properties but also depot- and BMI-dependent proportions. Furthermore, we identified an omental-specific, high IGFBP2- expressing stromal population that transitions between mesothelial and mesenchymal cell states and inhibits hASPC adipogenesis through IGFBP2 secretion. Our analyses highlight the molecular and cellular uniqueness of different adipose niches while our discovery of an anti-adipogenic IGFBP2+ omental-specific population provides a new rationale for the biomedically relevant, limited adipogenic capacity of omental hASPCs.

Abstract Adipose stem and precursor cells (ASPCs) give rise to adipocytes and determine the composition and plasticity of adipose tissue. Recently, several studies have demonstrated that ASPCs partition into at least three distinct cell subpopulations: Dpp4 + stem-like cells, Aoc 3+ pre-adipocyte-like cells, and the enigmatic CD142+ cells. A great challenge now is to functionally characterize these distinct ASPC populations. Here, we focus on CD142+ ASPCs since discrepant properties have been assigned to this subpopulation, from adipogenic to non- and even anti-adipogenic. To address these inconsistencies, we comprehensively characterized mammalian subcutaneous CD142+ ASPCs across various sampling conditions. Our findings demonstrate that CD142+ ASPCs exhibit high molecular and phenotypic robustness, firmly supporting their non- and anti-adipogenic properties. However, these properties emerge in an age-dependent manner, revealing surprising temporal CD142+ ASPC behavioural alterations. Finally, using multi-omic and functional assays, we show that the inhibitory nature of these adipogenesis-regulatory CD142+ ASPCs (Aregs) is driven by specifically expressed secretory factors that cooperate with the retinoic acid signalling pathway to transform the adipogenic state of CD142− ASPCs into a non-adipogenic, Areg-like one.