Long noncoding RNAs (lncRNAs) have surpassed the number of protein-coding genes, yet the majority have no known function. We previously discovered >800 lncRNAs at regions identified by breast cancer genome-wide association studies (GWAS). Here, we performed a pooled CRISPR-Cas13d RNA knockdown screen to identify which of these lncRNAs altered cell proliferation. We found that KILR, a lncRNA that functions as a tumor suppressor, safeguards breast cells against uncontrolled proliferation. The half-life of KILR is significantly reduced by the risk haplotype, revealing an alternative mechanism by which variants alter cancer risk. We showed that KILR sequesters RPA1, a subunit of the RPA complex, required for DNA replication and repair. Reduced KILR expression promotes cell proliferation by increasing the available pool of RPA1 and the speed of DNA replication. Our findings confirm lncRNAs as mediators of breast cancer risk, emphasize the need to annotate noncoding transcripts in relevant cell types when investigating GWAS variants and provide a scalable platform for mapping phenotypes associated with lncRNAs.

Abstract Acute myeloid leukemia (AML) is a genetically heterogeneous, aggressive hematological malignancy induced by distinct oncogenic driver mutations. The effect of specific AML oncogenes on immune activation or suppression has not been investigated. Here, we examine immune responses in genetically distinct models of AML and demonstrate that specific AML oncogenes dictate immunogenicity, the quality of immune response and immune escape through immunoediting. Specifically, expression of Nras G12D alone is sufficient to drive a potent anti-leukemia response through increased MHC Class II expression that can be overcome with increased expression of Myc. These data have important implications for the design and implementation of personalized immunotherapies for patients with AML. Statement of Significance The endogenous immune response against acute myeloid leukemia (AML) is determined by leukemia-specific oncogenic driver mutations. Mutant Nras drives immunological selection of AML.

Summary Hematopoietic stem and progenitor cells (HSPCs) rely on a complex interplay of transcription factors (TFs) to regulate differentiation into mature blood cells. A heptad of TFs - FLI1, ERG, GATA2, RUNX1, TAL1, LYL1, LMO2 - bind regulatory elements in bulk CD34+ HSPCs. However, whether specific heptad-TF combinations have distinct roles in regulating hematopoietic differentiation remained unknown. We mapped genome-wide chromatin contacts and TF binding profiles in HSPC subsets (HSC, CMP, GMP, MEP) and found that heptad occupancy and enhancer-promoter interactions varied significantly across cell types and were associated with cell-type-specific gene expression. Distinct regulatory elements were enriched with specific heptad-TF combinations, including stem-cell-specific elements with ERG, and myeloid- and erythroid-specific elements with combinations of FLI1, RUNX1, GATA2, TAL1, LYL1, and LMO2. These findings suggest that specific heptad-TF combinations play critical roles in regulating hematopoietic differentiation and provide a valuable resource for development of targeted therapies to manipulate specific HSPC subsets.