Abstract A wide range of neurological manifestations have been associated with the development of COVID-19 following SARS-CoV-2 infection. However, the etiology of the neurological symptomatology is still largely unexplored. Here, we used state-of-the-art multiplexed immunostaining of human brains ( n = 6 COVID-19, median age = 69,5 years; and n = 7 control, median age = 68 years), and demonstrated that expression of the SARS-CoV-2 receptor ACE2 is restricted to a subset of neurovascular pericytes. Strikingly, neurological symptoms were exclusive to, and ubiquitous in, patients that exhibited moderate to high ACE2 expression in peri-vascular cells. Viral particles were identified in the vascular wall and paralleled by peri-vascular inflammation, as signified by T cell and macrophage infiltration. Furthermore, fibrinogen leakage indicated compromised integrity of the blood-brain barrier. Notably, cerebrospinal fluid from an additional 16 individuals ( n = 8 COVID-19, median age = 67 years; and n = 8 control, median age = 69,5 years) exhibited significantly lower levels of the pericyte marker PDGFRβ in SARS-CoV-2-infected cases, indicative of disrupted pericyte homeostasis. We conclude that pericyte infection by SARS-CoV-2 underlies virus entry into the privileged central nervous system space, as well as neurological symptomatology due to peri-vascular inflammation and a locally compromised blood-brain barrier.

Severe Coronavirus disease 2019 (COVID-19) induces heterogeneous and progressive diffuse alveolar damage (DAD) highly disrupting lung tissue architecture and homeostasis, hampering disease management and leading to fatal outcomes. Characterizing DAD pathophysiology across disease progression is of ultimate importance to better understand the molecular and cellular features driving different DAD patterns and to optimize treatment strategies. To contextualize the interplay between cell types and assess their distribution, spatial transcriptomics (ST) techniques have emerged allowing unprecedented resolution to investigate spatial architecture of tissues. To this end, post-mortem lung tissue provides valuable insights into cellular composition and their spatial relationships at the time of death. Here, we have leveraged VisumST technology in post-mortem COVID-19 induced acute and proliferative DAD lungs including control samples with normal morphological appearance to unravel the immunopathological mechanisms underlying DAD providing novel insights into cellular and molecular communication events driving DAD progression in fatal COVID-19. We report a progressive loss of endothelial cell types, pneumocytes type I and natural killer cells coupled with a continuous increase of myeloid and stromal cells, mostly peribronchial fibroblasts, over disease progression. Spatial organization analysis identified variable cellular compartments, ranging from major compartments defined by cell type lineages in control lungs to increased and more specific compartmentalization including immune-specific clusters across DAD spectrum. Importantly, spatially informed ligand-receptor interaction (LRI) analysis revealed an intercellular communication signature defining COVID-19 induced DAD lungs. Transcription factor (TF) activity enrichment analysis identified TGF-B pathway as DAD driver, highlighting SMAD3 and SMAD7 TFs activity role during lung fibrosis. Integration of deregulated LRIs and TFs activity, allowed us to propose a downstream intracellular signaling pathway in peribronchial fibroblasts, suggesting potential novel therapeutic targets. Finally, spatio-temporal trajectories analysis provided insights into the alveolar epithelium regeneration program, characterizing markers of pneumocytes type II differentiation towards pneumocytes type I. In conclusion, we provide a spatial characterization of lung tissue architecture upon COVID-19 induced DAD progression, identifying molecular and cellular hallmarks that may help optimize treatment and patient management.