Reactive astrocytes play critical roles after brain injuries but their precise function in stroke is not well defined. Here, we utilized single nuclei transcriptomics to characterize astrocytes after ischemic stroke in nonhuman primate (NHP) marmoset monkey primary visual cortex. We identified 19 putative subtypes of astrocytes from injured and uninjured brain hemispheres and observed nearly complete segregation between stroke and control astrocyte clusters. We then screened for genes that might be limiting stroke recovery and discovered that one neurite-outgrowth inhibitory protein, NogoA, previously associated with oligodendrocytes but not astrocytes, was expressed in numerous reactive astrocyte subtypes. NogoA upregulation on reactive astrocytes was confirmed in vivo for NHP and human, but not observed to the same extent in rodent. Further in vivo and in vitro studies determined that NogoA mediated an anti-inflammatory response which limits deeper infiltration of peripheral macrophages from the lesion during the subacute post-stroke period. Specifically, these findings are relevant to the development of NogoA-targeting therapies shortly after ischemic stroke. Our findings have uncovered the complexity and species specificity of astrocyte responses, which need to be considered more when investigating novel therapeutics for brain injury.

A mechanistic connection between aging and development is largely unexplored. Through profiling age-related chromatin and transcriptional changes across 22 murine cell types, analyzed alongside previous mouse and human organismal maturation datasets, we uncovered a transcription factor binding site (TFBS) signature common to both processes. Early-life candidate cis-regulatory elements (cCREs), progressively losing accessibility during maturation and aging, are enriched for cell-type identity TFBSs. Conversely, cCREs gaining accessibility throughout life have a lower abundance of cell identity TFBSs but elevated activator protein 1 (AP-1) levels. We implicate TF redistribution toward these AP-1 TFBS-rich cCREs, in synergy with mild downregulation of cell identity TFs, as driving early-life cCRE accessibility loss and altering developmental and metabolic gene expression. Such remodeling can be triggered by elevating AP-1 or depleting repressive H3K27me3. We propose that AP-1-linked chromatin opening drives organismal maturation by disrupting cell identity TFBS-rich cCREs, thereby reprogramming transcriptome and cell function, a mechanism hijacked in aging through ongoing chromatin opening.