Circular RNA (circRNA) is a large group of RNA family extensively existed in cells and tissues. High-throughput sequencing provides a way to view circRNAs across different samples, especially in various diseases. However, there is still no comprehensive database for exploring the cancer-specific circRNAs. We collected 228 total RNA or polyA(-) RNA-seq samples from both cancer and normal cell lines, and identified 272 152 cancer-specific circRNAs. A total of 950 962 circRNAs were identified in normal samples only, and 170 909 circRNAs were identified in both tumor and normal samples, which could be further used as non-tumor background. We constructed a cancer-specific circRNA database (CSCD, http://gb.whu.edu.cn/CSCD). To understand the functional effects of circRNAs, we predicted the microRNA response element sites and RNA binding protein sites for each circRNA. We further predicted potential open reading frames to highlight translatable circRNAs. To understand the association between the linear splicing and the back-splicing, we also predicted the splicing events in linear transcripts of each circRNA. As the first comprehensive cancer-specific circRNA database, we believe CSCD could significantly contribute to the research for the function and regulation of cancer-associated circRNAs.

Abstract The recently emerged pathogenic severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) has spread rapidly, leading to a global COVID-19 pandemic. Binding of the viral spike protein (SARS-2-S) to cell surface receptor angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) mediates host cell infection. In the present study, we demonstrate that in addition to ACE2, the S1 subunit of SARS-2-S binds to HDL and that SARS-CoV-2 hijacks the SR-B1-mediated HDL uptake pathway to facilitate its entry. SR-B1 facilitates SARS-CoV-2 entry into permissive cells by augmenting virus attachment. MAb (monoclonal antibody)-mediated blocking of SARS-2-S-HDL binding and SR-B1 antagonists strongly inhibit HDL-enhanced SARS-CoV-2 infection. Notably, SR-B1 is co-expressed with ACE2 in human pulmonary and extrapulmonary tissues. These findings revealed a novel mechanism for SARS-CoV-2 entry and could provide a new target to treat SARS-CoV-2 infection.

Polymorphism within the T cell receptor beta variable gene (TRBV) has been implicated in autoimmune disease and immune-related adverse events (IRAEs) during immunotherapy. Previous efforts to evaluate TRBV polymorphism by whole genome sequencing (WGS) have been hampered by the repetitive nature of the TCRB locus. We present a novel long-amplicon TCRB repertoire sequencing approach to evaluate TRBV polymorphism from peripheral blood, which we use to identify TRBV allele haplotypes in 81 Caucasians.

Proteins are usually deciphered by translation of the coding genome; however, their amino acid residues are seldom determined directly across the proteome. Herein, we describe a systematic workflow for identifying all possible protein residues that differ from the coding genome, termed noncoded amino acids (ncAAs). By measuring the mass differences between the coding amino acids and the actual protein residues in human spermatozoa, over a million nonzero delta masses were detected, fallen into 424 high-quality Gaussian clusters and 571 high-confidence ncAAs spanning 29,053 protein sites. Most ncAAs are novel with unresolved side-chains and discriminative between healthy individuals and patients with oligoasthenospermia. For validation, 40 out of 98 ncAAs that matched with amino acid substitutions were confirmed by exon sequencing. This workflow revealed the widespread existence of previously unreported ncAAs in the sperm proteome, which represents a new dimension on the understanding of amino acid polymorphisms at the proteomic level.