In January 2020, coronavirus SARS-CoV-2 was identified as the cause of an outbreak of severe pneumonia, now known to be a complication of the coronavirus disease 2019 (covid-19). 1 Since then, the spread of covid-19 has increased exponentially, with the World Health Organization declaring a pandemic on 11 March. 2 By 15 April, more than 1 900 000 cases and 123 000 deaths had been reported worldwide.

Abstract The cellular mechanisms of kidney tubule repair are poorly characterized in human. Here, we applied single-nucleus RNA sequencing to analyze the kidney in the first days after acute injury in 5 critically ill patients with COVID-19. We identified abnormal proximal tubule cell states associated with injury, characterized by altered functional and metabolic profiles and by pro-fibrotic properties. Tubule repair involved the plasticity of mature tubule cells in a process of cell de-differentiation and re-differentiation, which displayed substantial similarities between mouse and man. In addition, in man we identified a peculiar tubule reparative response determining the expansion of progenitor-like cells marked by PROM1 and following a differentiation program characterized by the sequential activation of the WNT, NOTCH and HIPPO signaling pathways. Taken together, our analyses reveal cell state transitions and fundamental cellular hierarchies underlying kidney injury and repair in critically ill patients.

Abstract Metagenomic approaches enable an open exploration of microbial communities without requiring a priori knowledge of a sample’s composition by shotgun sequencing the total RNA or DNA of the sample. Such an approach is valuable for exploratory diagnostics of novel pathogens in clinical practice. Yet, one may also identify surprising off-target findings. Here we report a mostly complete transcriptome from a drain fly (likely Psychoda alternata ) as well as a novel Rhabdovirus-like virus recovered from two independent contaminations of RNA sequencing libraries from clinical samples of cerebral spinal fluid (CSF) and serum, out of a total of 724 libraries sequenced at the same laboratory during a 2-year time span. This drain fly genome shows a considerable divergence from previously sequenced insects, which may obscure common clinical metagenomic analyses not expecting such contaminations. The classification of these contaminant sequences allowed us to identify infected drain flies as the likely origin of the novel Rhabdovirus-like sequence, which could have been erroneously linked to human pathology, had they been ignored.

Neuraminidase (NA) inhibitors (NAIs), including oseltamivir and zanamivir, play an important therapeutic role against influenza infections in immunocompromised patients. In such settings, however, NAI therapy may lead to the emergence of resistance involving mutations within the influenza surface genes. The aim of this study was to investigate the evolution of hemagglutinin (HA) and NA genes of influenza A(H1N1)pdm09 virus in an immunocompromised patient receiving oseltamivir then zanamivir therapies. Nasopharyngeal swabs (NPS) samples were collected between 01-27-2018 and 04-20-2018 from a hematopoietic stem cell transplant recipient. These included 11 samples collected either pre-therapy, during oseltamivir and zanamivir as well as after therapy. The A(H1N1)pdm09 HA/NA genes were sequenced. The H275Y NA substitution was quantified by droplet digital RT-PCR assay. A(H1N1)pdm09 recombinant viruses containing HA mutations were tested by HA elution experiments to investigate in vitro binding properties. Oseltamivir rapidly induced the H275Y NA mutation which constituted 98.33% of the viral population after 15 days of oseltamivir treatment. The related HA gene contained S135A and P183S substitutions within the receptor-binding site. After a switch to zanamivir, 275H/Y and 119E/G/D mixed populations were detected. In the last samples, the double H275Y-E119G NA variant dominated with S135A and P183S HA substitutions. This report confirms that oseltamivir can rapidly induce the emergence of the H275Y substitution in A(H1N1)pdm09 viruses and subsequent switch to zanamivir can lead to additional substitutions at codon E119 resulting in multi-drug resistance. Such data highlight the need for novel antiviral agents.