ABSTRACT To combat the global burden of malaria, development of new drugs to replace or complement current therapies are urgently required. As drug resistance to existing treatments and clinical failures continue to rise, compounds targeting multiple life cycle stages and species need to be developed as a high priority. Here we show that the compound MMV1557817 is a nanomolar inhibitor of both Plasmodium falciparum and Plasmodium vivax aminopeptidases M1 and M17, leading to inhibition of end stage haemoglobin digestion in asexual parasites. Multi-stage analysis confirmed that MMV1557817 can also kill sexual stage P. falciparum , while cross-resistance studies confirmed the compound targets a mechanism of action distinct to current drug resistance mechanisms. Analysis of cross reactivity to homologous human enzymes shows the compound exhibits a high level of selectivity, whilst safety as well as druggability was confirmed in the murine model P. berghei . MMV1557817- resistant P. falciparum parasites displayed only low-level resistance (<3-fold) and exhibited a slow growth rate that was quickly outcompeted by wild type parasites. MMV1557817- resistant parasites digest significantly more haemoglobin and possess a mutation in Pf A-M17 that induces partial destabilisation of the Pf A-M17 homohexamer, resulting in high-level resistance to specific Pf A-M17 inhibition, but enhanced sensitivity to specific Pf A-M1 inhibition, and importantly, these parasites were highly sensitive to artemisinin. Overall, these results confirm MMV1557817 as a potential lead compound for further drug development and highlight the potential of dual inhibition of M1 and M17 as an effective multi-species drug targeting strategy.

Ozonide antimalarials, OZ277 (arterolane) and OZ439 (artefenomel), are synthetic peroxide-based antimalarials with potent activity against the deadliest malaria parasite, Plasmodium falciparum . Here we used a “multi-omics” workflow, in combination with activity-based protein profiling (ABPP), to demonstrate that peroxide antimalarials initially target the haemoglobin (Hb) digestion pathway to kill malaria parasites. Time-dependent metabolomic profiling of ozonide-treated P. falciparum infected red blood cells revealed a rapid depletion of short Hb-derived peptides followed by subsequent alterations in lipid and nucleotide metabolism, while untargeted peptidomics showed accumulation of longer Hb-derived peptides. Quantitative proteomics and ABPP assays demonstrated that Hb-digesting proteases were increased in abundance and activity following treatment, respectively. The association between ozonide activity and Hb catabolism was also confirmed in a K13 -mutant artemisinin resistant parasite line. To demonstrate that compromised Hb catabolism may be a primary mechanism involved in ozonide antimalarial activity, we showed that parasites forced to rely solely on Hb digestion for amino acids became hypersensitive to short ozonide exposures. Quantitative proteomics analysis also revealed parasite proteins involved in translation and the ubiquitin-proteasome system were enriched following drug treatment, suggestive of the parasite engaging a stress response to mitigate ozonide-induced damage. Taken together, these data point to a mechanism of action involving initial impairment of Hb catabolism, and indicate that the parasite regulates protein turnover to manage ozonide-induced damage.

Abstract Plasmodium falciparum causes the most lethal form of malaria. Peroxide antimalarials based on artemisinin underpin the frontline treatments for malaria, but artemisinin resistance is rapidly spreading. Synthetic peroxide antimalarials, known as ozonides, are in clinical development and offer a potential alternative. Here, we used chemoproteomics to investigate the protein alkylation targets of artemisinin and ozonide probes, including an analogue of the ozonide clinical candidate, artefenomel. We greatly expanded the list of protein targets for peroxide antimalarials and identified significant enrichment of redox-related proteins for both artemisinins and ozonides. Disrupted redox homeostasis was confirmed by dynamic live imaging of the glutathione redox potential using a genetically encoded redox-sensitive fluorescence-based biosensor. Targeted LC-MS-based thiol metabolomics also confirmed changes in cellular thiol levels. This work shows that peroxide antimalarials disproportionately alkylate proteins involved in redox homeostasis and that disrupted redox processes are involved in the mechanism of action of these important antimalarials. Importance The frontline treatments for malaria are combination therapies based on the peroxide antimalarial, artemisinin. Concerningly, artemisinin resistance has emerged in malaria-endemic regions, and now poses a major threat to malaria treatment and eradication efforts. New medicines are urgently required to replace the artemisinins, and some of the most advanced candidates are the fully synthetic peroxide antimalarials, OZ277 (arterolane) and OZ439 (artefenomel). The mechanism of action of peroxide antimalarials involves the reductive activation of the peroxide bond by intra-parasitic haem, but there is no consensus regarding the specific protein targets of the resulting radical species for artemisinins and/or the ozonides. This study provides a comprehensive and unbiased chemoproteomic profile of over 400 target proteins, and confirms the specific impact of peroxide antimalarials on redox metabolism. The key role of redox targets is particularly relevant considering that the mechanism of artemisinin resistance appears to involve modulation of peroxide activation and redox homeostasis.