Reversing CD8+ T cell dysfunction is crucial in treating chronic hepatitis B virus (HBV) infection, yet specific molecular targets remain unclear. Our study analyzed co-signaling receptors during hepatocellular priming and traced the trajectory and fate of dysfunctional HBV-specific CD8+ T cells. Early on, these cells upregulate PD-1, CTLA-4, LAG-3, OX40, 4-1BB, and ICOS. While blocking co-inhibitory receptors had minimal effect, activating 4-1BB and OX40 converted them into antiviral effectors. Prolonged stimulation led to a self-renewing, long-lived, heterogeneous population with a unique transcriptional profile. This includes dysfunctional progenitor/stem-like (TSL) cells and two distinct dysfunctional tissue-resident memory (TRM) populations. While 4-1BB expression is ubiquitously maintained, OX40 expression is limited to TSL. In chronic settings, only 4-1BB stimulation conferred antiviral activity. In HBeAg+ chronic patients, 4-1BB activation showed the highest potential to rejuvenate dysfunctional CD8+ T cells. Targeting all dysfunctional T cells, rather than only stem-like precursors, holds promise for treating chronic HBV infection.

Treatment with anti-CD20, used in many diseases in which B cells play a pathogenic role, has been associated with susceptibility to intracellular infections. Here, we studied the effect of anti-CD20 injection on CD8+ T cell immunity using an experimental model of Trypanosoma cruzi infection, in which CD8+ T cells play a pivotal role. C57BL/6 mice were treated with anti-CD20 for B cell depletion prior to T. cruzi infection. Infected anti-CD20-treated mice exhibited a CD8+ T cell response with a conserved expansion phase followed by an early contraction, resulting in a strong reduction in total and parasite-specific CD8+ T cells at 20 days postinfection. Anti-CD20 injection decreased the number of effector and memory CD8+ T cells and reduced the frequency of proliferating and cytokine-producing CD8+ T cells. Accordingly, infected anti-CD20-treated mice presented lower cytotoxicity of T. cruzi peptide-pulsed target cells in vivo. All of these alterations in CD8+ T cell immunity were associated with increased tissue parasitism. Anti-CD20 injection also dampened an established CD8+ T cell response, indicating that B cells were involved in the maintenance rather than the induction of CD8+ T cell immunity. Anti-CD20 injection also resulted in a marked reduction in the frequency of IL-6- and IL-17A-producing cells, and only rIL-17A injection partially restored the CD8+ T cell response in infected anti-CD20-treated mice. Thus, anti-CD20 reduced CD8+ T cell immunity, and IL-17A is a candidate for rescuing deficient responses either directly or indirectly.

ABSTRACT The role of IL-17 mediated immune responses in cancer is conflicting as pre-clinical and clinical results show tumor-promoting as wel as tumor-repressing functions. Herein, we used syngeneic tumor models from different tissue origins as a tool to evaluate the role of IL-17 signaling in cancer progression, dissecting the effects in cancer cell growth and tumor immunity. We show that absence of IL-17RA or IL-17A/F expression in the host has contrasting effects in the in vivo growth of different tumor types. We observed that lack of IL-17A/F-IL-17RA signaling in host cells changed the expression pattern of several mediators within the tumor microenvironment in a cancer-type specific manner. Deficiencies in host IL-17RA or IL-17A/F expression resulted in reduced antitumor CD8+ T cell immunity in all cancer models and in tumor-specific changes in several lymphoid cell populations. These findings were associated to particular patterns of expression of cytokines (IL-17A and IL-17F) and receptor subunits (IL-17RA, IL-17RC and IL-17RD) of the IL-17 family in the injected tumor cell lines that, in turn, dictated tumor cell responsiveness to IL-17. We identified IL-17RC as an important determinant of the IL-17-mediated transcriptional response in tumor cells and; consequently, as a predictive biomarker of the overall effect of IL-17 signaling in tumor progression. Our findings contribute to unraveling the molecular mechanisms underlying the divergent activities of IL-17 in cancer and provide rational targets for immunotherapies based on personalized approaches.

ABSTRACT During infections with protozoan parasites or virus, T cell immunosuppression is generated simultaneously with a high B cell activation. Here, we show that in T. cruzi infection, all plasmablasts detected had higher surface expression of PD-L1, than other mononuclear cells. PD-L1 hi plasmablasts were induced in vivo in an antigen-specific manner and required help from Bcl-6 + CD4 + T cells. PD-L1 hi expression was not a characteristic of all antibody-secreting cells since plasma cells found during the chronic phase of infection express PD-L1 but at lower levels. PD-L1 hi plasmablasts were also present in mice infected with Plasmodium or with lymphocytic choriomeningitis virus, but not in mice with autoimmune disorders or immunized with T cell-dependent antigens. PD-L1 hi plasmablasts suppressed T cell response, via PD-L1, in vitro and in vivo . Thus, this study reveals that extrafollicular PD-L1 hi plasmablasts, which precede the germinal center (CG) response, are a suppressive population in infections that may influence T cell response. Brief summary Pathogens develop different strategies to settle in the host. We identified a plasmablats population induced by pathogens in acute infections which suppress T cell response.