These experiments were designed to evaluate the role of macrophage plasma membrane receptors for the third component of complement (C) and for the Fc portion of IgG in the ingestion phase of phagocytosis. Sheep erythrocyte (E) were coated with anti-E IgG [E(IgG)]; these E(IgG) were then attached to cultivated monolayers of mouse peritoneal macrophages under conditions which reversibly inhibit ingestion of E(IgG). The E(IgG)-macrophage complexes were further incubated under similar conditions with an antimacrophage IgG fraction which blocks Fc receptor-mediated ingestion but has no effect upon ingestion mediated by other phagocytic receptors. When these cultures were subsequently incubated under conditions optimal for particle ingestion, phagocytosis of the IgG-coated erythrocytes did not occur; the erythrocytes remained bound to the Fc receptors of the macrophage plasma membrane. To determine whether ligands must cover the entire surface of an attached particle to permit ingestion of that particle, C-coated E [E(IgM)C] were bound to the C receptors of thioglycollate-induced (activated) macrophages at 4 degrees C. E(IgM)C-macrophage complexes were then trypsinized at 4 degrees C, a procedure which resulted in cleavage of erythrocyte-bound C3b molecules to a form of C3 not recognized by the macrophage receptors for C3b. Under the conditions used, trypsin did not affect the attachment of E(IgM)C to the macrophage surface or the macrophage receptors for C3b. When these trypsin treated E(IgM)C-macrophage complexes were incubated at 37 degrees C, the bound E(IgM)C were not ingested; the erythrocytes remained attached to the macrophage plasma membrane via the macrophage's C receptors. These results indicate that attachment of a particle to specific receptors on the macrophage plasma membrane is not sufficient to trigger ingestion of that particle. Rather, ingestion requires the sequential, circumferential interaction of particle-bound ligands with specific plasma membrane receptors not involved in the initial attachment process.

We have examined the roles of Fc receptors and complement receptors in mediating the interaction of sensitized sheep erythrocytes (E) with activated and with nonactivated mouse peritoneal macrophages. Both activated and nonactivated macrophages ingest IgG-coated erythrocytes [E(IgG)]; activated cells intest 1.5-2 times as man E(IgG) as do nonactivated macrophages. Thus, there is a quantitative difference in Fc receptor-mediated ingestion between activated and nonactivated macrophages. There is, however, a qualitative difference in function of complement receptors of activated and nonactivated macrophages. Nonactivated macrophages avidly bind complement-coated E [E(IgM)Ia1, but do not ingest them to a significant degree. Activated macrophages, on the other hand, bind and ingest E(IgM)C. The possibility of Fc receptor participation in mediating ingestion of E(IgM)C by activated macrophages was eliminated by blocking Fc receptors with an antimacrophage IgG fraction. Activated macrophages treated with antimacrophage IgG did not ingest E(igG) but did ingest both E(IgM)C AND E(IgM)C. Nonactivated macrophages treated with antimacrophage IgG did not interact at all with E(IgG). These cells bound, but did not ingest, E(IgM)C and E(IgM)C. Complement receptor-mediated ingestion is a marker for macrophage activation and may be physiologically important in the elimination of complement-coated particles.

Relapsed and refractory multiple myeloma (RRMM) is a plasma cell neoplasm defined by progressively refractory disease necessitating chronic and increasingly intensive therapy. Despite recent advances, limited treatment options exist for RRMM. This single-arm, open label phase 1 study (NCT04155749) aimed to evaluate the safety of novel BCMA-targeting CAR T construct that leverages a completely synthetic antigen binding domain (CART-ddBCMA), which was specifically engineered to reduce immunogenicity and improve CAR cell surface stability. Thirteen RRMM patients with age ≥18 years who received at least 3 prior regimens of systemic therapy were enrolled in the study. Patients received a single dose of 100x106 CART-ddBCMA (DL1) or 300x106 CART-ddBCMA (DL2) following standard lymphodepleting chemotherapy. The primary endpoints of the study were to evaluate the incidence of treatment emergent adverse events, including dose limiting toxicities, and establish a recommended phase 2 dose (RP2D). Results showed that CART-ddBCMA was well tolerated and demonstrated a favorable toxicity profile. Only 1 case of grade ≥3 CRS and ICANS were reported, which were both at DL2 and were manageable with standard treatment. No atypical neurological toxicities and Parkinson's disease-like movement disorders were observed. The maximum tolerated dose was not reached. All infused patients responded to CART-ddBCMA and 9/12 (75%) patients achieved CR/sCR. Responses deepened over time and at the time of last data-cut (median follow-up 56 weeks), 8/9 (89%) of evaluable patients achieved minimal residual disease negativity. In conclusion, the findings demonstrate the safety of CART-ddBCMA cells and document durable responses to CART-ddBCMA in RRMM patients.