SC
Susan Campbell
Author with expertise in Molecular Mechanisms of DNA Damage Response
Achievements
Cited Author
Open Access Advocate
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
6
(50% Open Access)
Cited by:
1,508
h-index:
30
/
i10-index:
47
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
65

Strand-resolved mutagenicity of DNA damage and repair

C. Anderson et al.Jun 10, 2022
Summary DNA base damage is a major source of oncogenic mutations 1 . Such damage can produce strand-phased mutation patterns and multiallelic variation through the process of lesion segregation 2 . Here, we exploited these properties to reveal how strand-asymmetric processes, such as replication and transcription, shape DNA damage and repair. Despite distinct mechanisms of leading and lagging strand replication 3,4 , we observe identical fidelity and damage tolerance for both strands. For small DNA adducts, our results support a model in which the same translesion polymerase is recruited on-the-fly to both replication strands, starkly contrasting the strand asymmetric tolerance of bulky adducts 5 . We find that DNA damage tolerance is also common during transcription, where RNA-polymerases frequently bypass lesions without triggering repair. At multiple genomic scales, we show the pattern of DNA damage induced mutations is largely shaped by the influence of DNA accessibility on repair efficiency, rather than gradients of DNA damage. Finally, we reveal specific genomic conditions that can corrupt the fidelity of nucleotide excision repair and actively drive oncogenic mutagenesis. These results provide insight into how strand-asymmetric mechanisms underlie the formation, tolerance, and repair of DNA damage, thereby shaping cancer genome evolution.
65
Citation10
0
Save
0

Strand-resolved mutagenicity of DNA damage and repair

C. Anderson et al.Jun 12, 2024
Abstract DNA base damage is a major source of oncogenic mutations 1 . Such damage can produce strand-phased mutation patterns and multiallelic variation through the process of lesion segregation 2 . Here we exploited these properties to reveal how strand-asymmetric processes, such as replication and transcription, shape DNA damage and repair. Despite distinct mechanisms of leading and lagging strand replication 3,4 , we observe identical fidelity and damage tolerance for both strands. For small alkylation adducts of DNA, our results support a model in which the same translesion polymerase is recruited on-the-fly to both replication strands, starkly contrasting the strand asymmetric tolerance of bulky UV-induced adducts 5 . The accumulation of multiple distinct mutations at the site of persistent lesions provides the means to quantify the relative efficiency of repair processes genome wide and at single-base resolution. At multiple scales, we show DNA damage-induced mutations are largely shaped by the influence of DNA accessibility on repair efficiency, rather than gradients of DNA damage. Finally, we reveal specific genomic conditions that can actively drive oncogenic mutagenesis by corrupting the fidelity of nucleotide excision repair. These results provide insight into how strand-asymmetric mechanisms underlie the formation, tolerance and repair of DNA damage, thereby shaping cancer genome evolution.
0
Citation2
0
Save
0

TRPV1 and mast cell involvement in repeated variate stress (RVS) induced urinary bladder dysfunction in adult female mice

Amanda Sidwell et al.Jul 11, 2024
The etiology of interstitial cystitis/bladder pain syndrome (IC/BPS) is unknown but likely multifactorial. IC/BPS symptoms can be exacerbated by psychological stress, but underlying mechanisms remain to be defined. TRPV1 channels, expressed on nerve fibers, have been implicated in bladder dysfunction and colonic hypersensitivity with stress in rodents. Histamine/H1R activation of TRPV1 + nerves increases bladder afferent fiber sensitivity to distension. TRPV1 channels are also expressed on mast cells, previously implicated in contributing to IC/BPS etiology and symptoms. We have examined the contribution of TRPV1 and mast cells to bladder dysfunction after repeated variate stress (RVS). RVS increased (p ≤ 0.05) serum and fecal corticosterone expression and induced anxiety-like behavior in wild type (WT) mice. Intravesical instillation of the selective TRPV1 antagonist capsazepine (CPZ) rescued RVS-induced bladder dysfunction in WT mice. Trpv1 knockout (KO) mice did not increase voiding frequency with RVS and did not exhibit increased serum corticosterone expression despite exhibiting anxiety-like behavior. Mast cell deficient mice ( B6.Cg-Kit w-sh ) failed to demonstrate RVS-induced increased voiding frequency or serum corticosterone expression whereas control (no stress) mast cell deficient mice had similar functional bladder capacity to WT mice. TRPV1 protein expression was significantly increased in the rostral lumbar (L1-L2) spinal cord and dorsal root ganglia in WT mice exposed to RVS but no changes were observed in lumbosacral (L6-S1) spinal segments or DRG. These studies demonstrated TRPV1 and mast cell involvement in RVS-induced increased voiding frequency and suggest that TRPV1 and mast cells may be useful targets to mitigate stress-induced urinary bladder dysfunction.