Abstract Nitrative stress is a characteristic feature of the pathology of human pulmonary arterial hypertension (PAH). However, the role of nitrative stress in the pathogenesis of obliterative vascular remolding and severe PAH remains largely unclear. Our recent studies identified a novel mouse model ( Egln1 Tie2Cre , Egln1 encoding prolyl hydroxylase 2 [PHD2]) with obliterative vascular remodeling and right heart failure, which provides us an excellent model to study the role of nitrative stress in obliterative vascular remodeling. Here we show that nitrative stress was markedly elevated whereas endothelial Caveolin-1 (Cav1) expression was suppressed in the lungs of Egln1 Tie2Cre mice. Treatment with a superoxide dismutase mimetic, manganese (III) tetrakis (1-methyl-4-pyridyl) porphyrin pentachloride (MnTmPyP, also known as a peroxynitrite scavenger) treatment inhibited obliterative pulmonary vascular remodeling and attenuated severe PAH in Egln1 Tie2Cre mice. Genetic restoration of endothelial Cav1 expression in Egln1 Tie2Cre mice normalized nitrative stress, reduced PAH and improved right heart function. These data suggest that suppression of endothelial Cav1 expression secondary to PHD2 deficiency augments nitrative stress, which contributes to obliterative vascular remodeling and severe PAH. Thus, reactive oxygen/nitrogen species scavenger might have great therapeutic potential for the inhibition of obliterative vascular remodeling and severe PAH.

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is characterized by a progressive increase of pulmonary vascular resistance and obliterative pulmonary vascular remodeling that result in right heart hypertrophy, failure, and premature death. The underlying mechanisms of loss of distal capillary endothelial cells (ECs) and obliterative vascular lesion formation remain unclear. Our recent single-cell RNA sequencing, spatial transcriptomics analysis, RNASCOPE, and immunostaining analysis showed that arterial ECs accumulation and loss of capillary ECs were evident in human PAH patients and pulmonary hypertension (PH) rodents. Pseudotime trajectory analysis of the single-cell RNA sequencing data suggest that lung capillary ECs transit to arterial ECs during the development of PH. Our study also identified CXCL12 as the marker for arterial ECs in PH. Capillary EC lineage tracing approach using capillary specific-Dre;Tdtomato reporter mice demonstrated that capillary ECs gave rise to arterial ECs during PH development. Genetic deletion of HIF-2a or pharmacological inhibition of Notch4 normalized the arterial programming in PH. In conclusion, our study demonstrates that capillary endothelium transits to arterial endothelium through the HIF-2a-Notch4 pathway during the development of PAH. Thus, targeting arterial EC transition might be a novel approach for treating PAH patients.

Nerve guide conduits are a promising strategy for reconstructing peripheral nerve defects. Improving the survival rate of seed cells in nerve conduits is still a challenge and microcarriers are an excellent three-dimensional (3D) culture scaffold. Here, we investigate the effect of the 3D culture of microcarriers on the biological characteristics of adipose mesenchymal stem cells (ADSCs) and to evaluate the efficacy of chitosan nerve conduits filled with microcarriers loaded with ADSCs in repairing nerve defects.

Rare genetic variants and genetic variation at loci in an enhancer in SRY-Box Transcription Factor 17 (SOX17) are identified in patients with idiopathic pulmonary arterial hypertension (PAH) and PAH with congenital heart disease. However, the exact role of genetic variants or mutation in SOX17 in PAH pathogenesis has not been reported.To investigate the role of SOX17 deficiency in pulmonary hypertension (PH) development.Human lung tissue and endothelial cells (ECs) from IPAH patients were used to determine the expression of SOX17. Tie2Cre-mediated and EC-specific deletion of Sox17 mice were assessed for PH development. Single-cell RNA sequencing analysis, human lung ECs, and smooth muscle cell culture were performed to determine the role and mechanisms of SOX17 deficiency. A pharmacological approach was used in Sox17 deficiency mice for therapeutic implication.SOX17 expression was downregulated in the lungs and pulmonary ECs of IPAH patients. Mice with Tie2Cre mediated Sox17 knockdown and EC-specific Sox17 deletion developed spontaneously mild PH. Loss of endothelial Sox17 in EC exacerbated hypoxia-induced PH in mice. Loss of SOX17 in lung ECs induced endothelial dysfunctions including upregulation of cell cycle programming, proliferative and anti-apoptotic phenotypes, augmentation of paracrine effect on pulmonary arterial smooth muscle cells, impaired cellular junction, and BMP signaling. E2F Transcription Factor 1 (E2F1) signaling was shown to mediate the SOX17 deficiency-induced EC dysfunction and PH development.Our study demonstrated that endothelial SOX17 deficiency induces PH through E2F1 and targeting E2F1 signaling represents a promising approach in PAH patients.

Abstract Background Cardiac hypertrophy and fibrosis are common adaptive responses to injury and stress, eventually leading to heart failure. Hypoxia signaling is important to the (patho)physiological process of cardiac remodeling. However, the role of endothelial Prolyl-4 hydroxylase 2 (PHD2)/hypoxia inducible factors (HIFs) signaling in the pathogenesis of heart failure remains elusive. Methods and Results Mice with Tie2 -Cre-mediated deletion of Egln1 (encoding PHD2) ( Egln1 Tie2Cre ) exhibited left ventricular (LV) hypertrophy evident by increased thickness of anterior and posterior wall and LV mass, as well as cardiac fibrosis. Tamoxifen-induced endothelial Egln1 deletion in adult mice also induced LV hypertrophy and fibrosis. Additionally, we observed a marked decrease of PHD2 expression in heart tissues and cardiovascular endothelial cells from patients with cardiomyopathy. Moreover, genetic ablation of Hif2a but not Hif1a in Egln1 Tie2Cre mice normalized cardiac size and function. RNA sequencing analysis also demonstrated HIF-2α as a critical mediator of signaling related to cardiac hypertrophy and fibrosis. Pharmacological inhibition of HIF-2α attenuated cardiac hypertrophy and fibrosis in Egln1 Tie2Cre mice. Conclusions The present studies define for the first time an unexpected role of endothelial PHD2 deficiency in inducing cardiac hypertrophy and fibrosis in a HIF-2α dependent manner. PHD2 was markedly decreased in cardiovascular endothelial cells in patients with cardiomyopathy. Thus, targeting PHD2/HIF-2α signaling may represent a novel therapeutic approach for the treatment of pathological cardiac hypertrophy and failure.

ABSTRACT Background DNA variants in APOL1 associate with kidney disease, but the pathophysiological mechanisms remain incompletely understood. Model organisms lack the APOL1 gene, limiting the degree to which disease states can be recapitulated. Here we present single-cell RNA sequencing (scRNA-seq) of genome-edited human kidney organoids as a platform for profiling effects of APOL1 risk variants in diverse nephron cell types. Methods We performed footprint-free CRISPR-Cas9 genome editing of human induced pluripotent stem cells (iPSCs) to knock in APOL1 high-risk G1 variants at the native genomic locus. iPSCs were differentiated into kidney organoids, treated with vehicle, IFN-γ, or the combination of IFN-γ and tunicamycin, and analyzed with scRNA-seq to profile cell-specific changes in differential gene expression patterns, compared to isogenic G0 controls. Results Both G0 and G1 iPSCs differentiated into kidney organoids containing nephron-like structures with glomerular epithelial cells, proximal tubules, distal tubules, and endothelial cells. Organoids expressed detectable APOL1 only after exposure to IFN-γ. scRNA-seq revealed cell type-specific differences in G1 organoid response to APOL1 induction. Additional stress of tunicamycin exposure led to increased glomerular epithelial cell dedifferentiation in G1 organoids. Conclusions Single-cell transcriptomic profiling of human genome-edited kidney organoids expressing APOL1 risk variants provides a novel platform for studying the pathophysiology of APOL1-mediated kidney disease. SIGNIFICANCE STATEMENT Gaps persist in our mechanistic understanding of APOL1-mediated kidney disease. The authors apply genome-edited human kidney organoids, combined with single-cell transcriptomics, to profile APOL1 risk variants at the native genomic locus in different cell types. This approach captures interferon-mediated induction of APOL1 gene expression and reveals cellular dedifferentiation after a secondary insult of endoplasmic reticulum stress. This system provides a human cellular platform to interrogate complex mechanisms and human-specific regulators underlying APOL1-mediated kidney disease.

Abstract Axin1 and Axin2 are key regulators of canonical Wnt signaling pathway. The roles of Axin1 and Axin2 in skeletal development and in disease development have not been fully defined. Here, we reported that Axin1 and Axin2 are essential for lower limb development. Specific deletion of Axin1 in limb mesenchymal cells leads to fibular hemimelia (FH)-like phenotype, associated with tarsal coalition. Further studies demonstrated that FH disease is associated with additional defects resembling to the proximal femoral focal deficiency (PFFD) in Axin1/Axin2 double knockout (KO) mice. We then provided in vivo evidence showing that Axin1 controls limb development through both canonical β-catenin and BMP signaling pathways. We demonstrated that inhibition of β-catenin or BMP signaling could significantly reverse the FH phenotype in mice. Together, our findings revealed that integration of Wnt and BMP signaling by Axin1 is required for lower limb development. Defects in Axin1 and Axin2 signaling could lead to the development of FH disease.