To determine, in a randomized clinical trial, whether high-dose therapy (HDT) followed by autologous stem-cell transplantation is more effective than standard treatment with regard to progression-free survival (PFS) and overall survival (OS) in patients with relapsed follicular non-Hodgkin's lymphoma; and to assess the additional value of B-cell purging of the stem-cell graft with regards to PFS and OS.Patients received three cycles of chemotherapy. Responding patients with limited bone marrow infiltration were eligible for random assignment to three further cycles of chemotherapy (C), unpurged HDT (U), or purged HDT (P).Between August 1993 and April 1997, 140 patients were registered from 36 centers internationally, and 89 were randomly assigned. Reasons for not randomizing included patient refusal, early progression, or death on induction therapy. With a 69-month median follow-up, the log-rank P value for PFS and OS were.0037 and.079, respectively. For PFS, the hazard ratios (95% CIs) for U versus C, P versus C, and P versus U were 0.33 (0.16 to 0.70), 0.38 (0.19 to 0.79), and 1.02 (0.51 to 2.05), respectively. The hazard ratio (95% CI) for C versus U + P was 0.30 (0.15 to 0.61). Hazard ratios (95% CIs) for OS were 0.43 (0.18 to 1.06), 0.43 (0.18 to 1.02), and 0.72 (0.32 to 1.63). For C versus U + P, the hazard ratio (95% CI) was 0.40 (0.18 to 0.89). Kaplan-Meier estimates (95% CIs) of 2-year PFS for C, U, and P were 26% (8% to 44%), 58% (37% to 79%), and 55% (34% to 75%), respectively. OS at 4 years for C, U, and P are 46% (25% to 67%), 71% (52% to 91%), and 77% (60% to 95%) respectively.HDT significantly improves PFS and OS. There is no clear evidence of benefit through purging.

There is a discrepancy between the in vitro anergic state of CD4(+)CD25(hi)FoxP3(+) regulatory T (Treg) cells and their in vivo proliferative capability. The underlying mechanism of this paradox is unknown. Here we show that the anergic state of Treg cells depends on the elevated activity of the mammalian target of rapamycin (mTOR) pathway induced by leptin: a transient inhibition of mTOR with rapamycin, before T cell receptor (TCR) stimulation, made Treg cells highly proliferative in the absence of exogenous interleukin-2 (IL-2). This was a dynamic and oscillatory phenomenon characterized by an early downregulation of the leptin-mTOR pathway followed by an increase in mTOR activation necessary for Treg cell expansion to occur. These data suggest that energy metabolism, through the leptin-mTOR-axis, sets responsiveness of Treg cells that use this information to control immune tolerance and autoimmunity.

The metabolic requirements of T cells vary according to their functional state. Matarese and colleagues show that the most functionally active human regulatory T cells are highly glycolytic and that this directly controls expression of a distinct splice variant of the transcription factor Foxp3. Human regulatory T cells (Treg cells) that develop from conventional T cells (Tconv cells) following suboptimal stimulation via the T cell antigen receptor (TCR) (induced Treg cells (iTreg cells)) express the transcription factor Foxp3, are suppressive, and display an active proliferative and metabolic state. Here we found that the induction and suppressive function of iTreg cells tightly depended on glycolysis, which controlled Foxp3 splicing variants containing exon 2 (Foxp3-E2) through the glycolytic enzyme enolase-1. The Foxp3-E2–related suppressive activity of iTreg cells was altered in human autoimmune diseases, including multiple sclerosis and type 1 diabetes, and was associated with impaired glycolysis and signaling via interleukin 2. This link between glycolysis and Foxp3-E2 variants via enolase-1 shows a previously unknown mechanism for controlling the induction and function of Treg cells in health and in autoimmunity.

Human CD4(+)CD25(hi)Foxp3(+)CD127(-) Treg and CD4(+)CD25(-)Foxp3(-) Tconv cell functions are governed by their metabolic requirements. Here we report a comprehensive comparative analysis between ex vivo human Treg and Tconv cells that comprises analyses of the proteomic networks in subcellular compartments. We identified a dominant proteomic signature at the metabolic level that primarily impacted the highly-tuned balance between glucose and fatty-acid oxidation in the two cell types. Ex vivo Treg cells were highly glycolytic while Tconv cells used predominantly fatty-acid oxidation (FAO). When cultured in vitro, Treg cells engaged both glycolysis and FAO to proliferate, while Tconv cell proliferation mainly relied on glucose metabolism. Our unbiased proteomic analysis provides a molecular picture of the impact of metabolism on ex vivo human Treg versus Tconv cell functions that might be relevant for therapeutic manipulations of these cells.

CD4+Foxp3+ regulatory T cells (Tregs) are key to maintain peripheral self-tolerance and suppress immune responses to tumors. Their accumulation in the tumor microenvironment (TME) correlates with poor clinical outcome in several human cancers, including breast cancer (BC). However, the properties of intratumoral Tregs remain largely unknown. Here, we found that a functionally distinct subpopulation of tumor-infiltrating Tregs, which express the Foxp3 splicing variant retaining exon 2 (Foxp3E2), is prominent in the TME and peripheral blood of hormone receptor-positive (HR+) BC subjects with poor prognosis. Notably, a comprehensive examination of the Tumor Cell Genome Atlas (TCGA) validated Foxp3E2 as an independent prognostic marker in all other BC subtypes. We found that FOXP3E2 expression underlies BCs with highly immune suppressive landscape, defective mismatch repair and a stem-like signature thus highlighting pathways involved in tumor immune evasion. Finally, we confirmed the higher immunosuppressive capacity of BC patients-derived Foxp3E2+ Tregs by functional assays. Our study suggests Foxp3E2+ Tregs might be used as an independent biomarker to predict BC prognosis and recurrence, and to develop super-targeted depletion-based immunotherapies.

Mass Mortality Events (MMEs) affecting the noble pen shell Pinna nobilis have been reported since 2016. In this work, we used an in vitro flow cytometric assay to evaluate phagocytosis, coupled with cytology and Electron Microscopy (TEM), to define animal immunocompetence following infection by P. nobilis Picornavirus (PnPV). The study was performed on 27 animals in July 2021 and May 2022 on two natural population from the Ebro Delta (Catalonia, Spain) and animals maintained in captivity at facilities in Valencia and Murcia Aquarium. Hemolymph was collected in the field and in captivity as a non-destructive sampling method. Based on dimension and internal complexity, flow cytometry identified three haemocyte types, distinguished in granulocytes, hyalinocytes and a third type, biggest in size and with high internal complexity and granularity. Those cells corresponded at ultrastructure to hemocytes with advanced phases of PnPV infection and related to cytopathic effect of the replicating virus displaying numerous Double Membrane Vesicles (DMVs) and cells corpse fusion. The results showed that pen shell in captivity had significantly lower Total Hemocyte Count (THC) compared with natural population of Alfacs Bay (mean number of 7-9 x 10