Porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS) remains a formidable challenge for the global pig industry. Caused by PRRS virus (PRRSV), this disease primarily affects porcine reproductive and respiratory systems, undermining effective host interferon and other immune responses, resulting in vaccine ineffectiveness. In the absence of specific antiviral treatments for PRRSV, vaccines play a crucial role in managing the disease. The current market features a range of vaccine technologies, including live, inactivated, subunit, DNA, and vector vaccines, but only modified live virus (MLV) and killed virus (KV) vaccines are commercially available for PRRS control. Live vaccines are promoted for their enhanced protective effectiveness, although their ability to provide cross-protection is modest. On the other hand, inactivated vaccines are emphasized for their safety profile but are limited in their protective efficacy. This review updates the current knowledge on PRRS vaccines’ interactions with the host interferon system, and other immunological aspects, to assess their current status and evaluate advents in PRRSV vaccine development. It presents the strengths and weaknesses of both live attenuated and inactivated vaccines in the prevention and management of PRRS, aiming to inspire the development of innovative strategies and technologies for the next generation of PRRS vaccines.

Porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS), caused by the highly variable PRRS virus (PRRSV), presents a significant challenge to the swine industry due to its pathogenic and economic burden. The virus evades host immune responses, particularly interferon (IFN) signaling, through various viral mechanisms. Traditional vaccines have shown variable efficacy in the field, prompting the exploration of novel vaccination strategies. This study investigates a reverse genetics approach to develop a modified live virus (MLV) vaccine expressing the potent antiviral cytokine interferon-ω5 (IFN-ω5) to combat PRRSV. The study utilizes an infectious cDNA clone of PRRSV, incorporating genetic modifications for IFN-ω5 expression. A comparative evaluation, including in vitro and particularly in vivo assessments here, was conducted to determine the vaccine's efficacy. Results indicate that pigs vaccinated with the IFN-ω5 MLV exhibited significant differences compared to the mock group in terms of body temperature, weight gain, antibody response, viral load, cytokine profile, and lung lesions following PRRSV challenge. This study underscores the potential of reverse genetics and IFN-ω5 expression as a promising strategy for developing effective PRRSV vaccines. The findings provide valuable insights into the mechanisms of immune response and viral pathogenesis, highlighting the importance of early immune activation in combating PRRSV infection.