AP
Anna Pyle
Author with expertise in Ribosome Structure and Translation Mechanisms
Achievements
Cited Author
Open Access Advocate
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
26
(81% Open Access)
Cited by:
4,132
h-index:
71
/
i10-index:
188
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
0

mda-5: An interferon-inducible putative RNA helicase with double-stranded RNA-dependent ATPase activity and melanoma growth-suppressive properties

Dong-chul Kang et al.Jan 22, 2002
Human melanoma cells can be reprogrammed to terminally differentiate and irreversibly lose proliferative capacity by appropriate pharmacological manipulation. Subtraction hybridization identified melanoma differentiation-associated gene-5 ( mda-5 ) as a gene induced during differentiation, cancer reversion, and programmed cell death (apoptosis). This gene contains both a caspase recruitment domain and putative DExH group RNA helicase domains. Atypical helicase motifs of MDA-5 deviate from consensus sequences but are well conserved in a potentially new group of cloned and hypothetical proteins. mda-5 is an early response gene inducible by IFN and tumor necrosis factor-α, responding predominantly to IFN-β. Protein kinase C activation by mezerein further augments mda-5 expression induced by IFN-β. Expression of mda-5 is controlled transcriptionally by IFN-β, and the MDA-5 protein localizes in the cytoplasm. mda-5 displays RNA-dependent ATPase activity, and ectopic expression of mda-5 in human melanoma cells inhibits colony formation. In these contexts, mda-5 may function as a mediator of IFN-induced growth inhibition and/or apoptosis. MDA-5 is a double-stranded RNA-dependent ATPase that contains both a caspase recruitment domain and RNA helicase motifs, with a confirmed association with growth and differentiation in human melanoma cells.
0

DNA photocleavage by phenanthrenequinone diimine complexes of rhodium(III): shape-selective recognition and reaction

Ayesha Sitlani et al.Mar 1, 1992
ADVERTISEMENT RETURN TO ISSUEPREVArticleNEXTDNA photocleavage by phenanthrenequinone diimine complexes of rhodium(III): shape-selective recognition and reactionAyesha Sitlani, Eric C. Long, Anna M. Pyle, and Jacqueline K. BartonCite this: J. Am. Chem. Soc. 1992, 114, 7, 2303–2312Publication Date (Print):March 1, 1992Publication History Published online1 May 2002Published inissue 1 March 1992https://pubs.acs.org/doi/10.1021/ja00033a003https://doi.org/10.1021/ja00033a003research-articleACS PublicationsRequest reuse permissionsArticle Views1088Altmetric-Citations324LEARN ABOUT THESE METRICSArticle Views are the COUNTER-compliant sum of full text article downloads since November 2008 (both PDF and HTML) across all institutions and individuals. These metrics are regularly updated to reflect usage leading up to the last few days.Citations are the number of other articles citing this article, calculated by Crossref and updated daily. Find more information about Crossref citation counts.The Altmetric Attention Score is a quantitative measure of the attention that a research article has received online. Clicking on the donut icon will load a page at altmetric.com with additional details about the score and the social media presence for the given article. Find more information on the Altmetric Attention Score and how the score is calculated. Share Add toView InAdd Full Text with ReferenceAdd Description ExportRISCitationCitation and abstractCitation and referencesMore Options Share onFacebookTwitterWechatLinked InRedditEmail Other access optionsGet e-Alertsclose Get e-Alerts
0

RNA translocation and unwinding mechanism of HCV NS3 helicase and its coordination by ATP

Sophie Dumont et al.Jan 1, 2006
Helicases are a ubiquitous class of enzymes involved in nearly all aspects of DNA and RNA metabolism. Despite recent progress in understanding their mechanism of action, limited resolution has left inaccessible the detailed mechanisms by which these enzymes couple the rearrangement of nucleic acid structures to the binding and hydrolysis of ATP1,2. Observing individual mechanistic cycles of these motor proteins is central to understanding their cellular functions. Here we follow in real time, at a resolution of two base pairs and 20 ms, the RNA translocation and unwinding cycles of a hepatitis C virus helicase (NS3) monomer. NS3 is a representative superfamily-2 helicase essential for viral replication3, and therefore a potentially important drug target4. We show that the cyclic movement of NS3 is coordinated by ATP in discrete steps of 11 ± 3 base pairs, and that actual unwinding occurs in rapid smaller substeps of 3.6 ± 1.3 base pairs, also triggered by ATP binding, indicating that NS3 might move like an inchworm5,6. This ATP-coupling mechanism is likely to be applicable to other non-hexameric helicases involved in many essential cellular functions. The assay developed here should be useful in investigating a broad range of nucleic acid translocation motors.
0

The Molecular Interactions That Stabilize RNA Tertiary Structure: RNA Motifs, Patterns, and Networks

Samuel Butcher et al.Sep 7, 2011
RNA molecules adopt specific three-dimensional structures critical to their function. Many essential metabolic processes, including protein synthesis and RNA splicing, are carried out by RNA molecules with elaborate tertiary structures (e.g. 3QIQ, right). Indeed, the ribosome and self-splicing introns are complex RNA machines. But even the coding regions in messenger RNAs and viral RNAs are flanked by highly structured untranslated regions, which provide regulatory information necessary for gene expression.RNA tertiary structure is defined as the three-dimensional arrangement of RNA building blocks, which include helical duplexes, triple-stranded structures, and other components that are held together through connections collectively termed RNA tertiary interactions. The structural diversity of these interactions is now a subject of intense investigation, involving the techniques of NMR, X-ray crystallography, chemical genetics, and phylogenetic analysis. At the same time, many investigators are using biophysical techniques to elucidate the driving forces for tertiary structure formation and the mechanisms for its stabilization. RNA tertiary folding is promoted by maximization of base stacking, much like the hydrophobic effect that drives protein folding. RNA folding also requires electrostatic stabilization, both through charge screening and site binding of metals, and it is enhanced by desolvation of the phosphate backbone. In this Account, we provide an overview of the features that specify and stabilize RNA tertiary structure.A major determinant for overall tertiary RNA architecture is local conformation in secondary-structure junctions, which are regions from which two or more duplexes project. At junctions and other structures, such as pseudoknots and kissing loops, adjacent helices stack on one another, and these coaxial stacks play a major role in dictating the overall architectural form of an RNA molecule. In addition to RNA junction topology, a second determinant for RNA tertiary structure is the formation of sequence-specific interactions. Networks of triple helices, tetraloop–receptor interactions, and other sequence-specific contacts establish the framework for the overall tertiary fold. The third determinant of tertiary structure is the formation of stabilizing stacking and backbone interactions, and many are not sequence specific. For example, ribose zippers allow 2'-hydroxyl groups on different RNA strands to form networks of interdigitated hydrogen bonds, serving to seal strands together and thereby stabilize adjacent substructures. These motifs often require monovalent and divalent cations, which can interact diffusely or through chelation to specific RNA functional groups.As we learn more about the components of RNA tertiary structure, we will be able to predict the structures of RNA molecules from their sequences, thereby obtaining key information about biological function. Understanding and predicting RNA structure is particularly important given the recent discovery that although most of our genome is transcribed into RNA molecules, few of them have a known function. The prevalence of RNA viruses and pathogens with RNA genomes makes RNA drug discovery an active area of research. Finally, knowledge of RNA structure will facilitate the engineering of supramolecular RNA structures, which can be used as nanomechanical components for new materials. But all of this promise depends on a better understanding of the RNA parts list, and how the pieces fit together.
Load More