Abstract The Delta variant originally from India is rapidly spreading across the world and causes to resurge infections of SARS-CoV-2. We previously reported that CT-P59 presented its in vivo potency against Beta and Gamma variants, despite its reduced activity in cell experiments. Yet, it remains uncertain to exert the antiviral effect of CT-P59 on the Delta and its associated variants (L452R). To tackle this question, we carried out cell tests and animal study. CT-P59 showed reduced antiviral activity but enabled neutralization against Delta, Epsilon, and Kappa variants in cells. In line with in vitro results, the mouse challenge experiment with the Delta variant substantiated in vivo potency of CT-P59 showing symptom remission and virus abrogation in the respiratory tract. Collectively, cell and animal studies showed that CT-P59 is effective against the Delta variant infection, hinting that CT-P59 has therapeutic potency for patients infected with Delta and its associated variants. Highlights CT-P59 exerts the antiviral effect on authentic Delta, Epsilon and Kappa variants in cell-based experiments. CT-P59 showed neutralizing potency against variants including Delta, Epsilon, Kappa, L452R, T478K and P681H pseudovirus variants. The administration of clinically relevant dose of CT-P59 showed in vivo protection against Delta variants in animal challenge experiment.

Abstract With the emergence of multiple highly transmissible SARS-CoV-2 variants during the recent pandemic, the comparison of their infectivity has become a substantially critical issue for public health. However, a direct assessment of these viral characteristics has been challenging due to the lack of appropriate experimental models and efficient methods. Here, we integrated human alveolar organoids and single-cell transcriptome sequencing techniques to facilitate the evaluation. In a proof-of-concept study using the assay with four highly transmissible SARS-CoV-2 variants, including GR (B.1.1.119), Alpha (B.1.1.7), Delta (B.1.617.2), and Omicron (BA.1), a rapid evaluation of the relative infectivity was possible. Our results demonstrate that the Omicron (BA.1) variant is 3-5-fold more infectious to human alveolar cells than the other SARS-CoV-2 variants at the early phase of infection. To our knowledge, this study provides the first direct measurement of the infectivity of the Omicron variant and new experimental procedures that can be applied for monitoring newly emerging viral variants.

Abstract Mouse models expressing human ACE2 for coronavirus disease 2019 have been frequently used to understand its pathogenesis and develop therapeutic strategies against SARS-CoV-2. Given that human TMPRSS2 supports viral entry, replication, and pathogenesis, we established a double-transgenic mouse model expressing both human ACE2 and TMPRSS2 for SARS-CoV-2 infection. Co-overexpression of both genes increased viral infectivity in vitro and in vivo. Double-transgenic mice showed significant body weight loss, clinical disease symptoms, acute lung injury, lung inflammation, and lethality in response to viral infection, indicating that they were highly susceptible to SARS-CoV-2. Pretreatment with the TMPRSS2 inhibitor, nafamostat, effectively reduced virus-induced weight loss, viral replication, and mortality in the double-transgenic mice. Moreover, the susceptibility and differential pathogenesis of SARS-CoV-2 variants were demonstrated in this animal model. Together, our results demonstrate that double-transgenic mice could provide a highly susceptible mouse model for viral infection to understand SARS-CoV-2 pathogenesis and evaluate antiviral therapeutics against coronavirus disease 2019.

SARS-CoV-2 is a betacoronavirus that is responsible for the COVID-19 pandemic. The genome of SARS-CoV-2 was reported recently, but its transcriptomic architecture is unknown. Utilizing two complementary sequencing techniques, we here present a high-resolution map of the SARS-CoV-2 transcriptome and epitranscriptome. DNA nanoball sequencing shows that the transcriptome is highly complex owing to numerous recombination events, both canonical and noncanonical. In addition to the genomic RNA and subgenomic RNAs common in all coronaviruses, SARS-CoV-2 produces a large number of transcripts encoding unknown ORFs with fusion, deletion, and/or frameshift. Using nanopore direct RNA sequencing, we further find at least 41 RNA modification sites on viral transcripts, with the most frequent motif being AAGAA. Modified RNAs have shorter poly(A) tails than unmodified RNAs, suggesting a link between the internal modification and the 3′ tail. Functional investigation of the unknown ORFs and RNA modifications discovered in this study will open new directions to our understanding of the life cycle and pathogenicity of SARS-CoV-2.Highlights

Abstract The ongoing emergence of SARS-CoV-2 Omicron subvariants and their rapid worldwide spread pose a threat to public health. From November 2022 to February 2023, newly emerged Omicron subvariants, including BQ.1.1, BF.7, BA.5.2, XBB.1, XBB.1.5, and BN.1.9, became prevalent global strains (>5% global prevalence). These Omicron subvariants are resistant to several therapeutic antibodies. Thus, the antiviral activities of current drugs such as remdesivir, molnupiravir, and nirmatrelvir, which target highly conserved regions of SARS-CoV-2, against newly emerged Omicron subvariants need to be evaluated. We assessed the antiviral efficacy of the drugs using half maximal inhibitory concentration (IC 50 ) against human isolated 23 Omicron subvariants and four former SARS-CoV-2 variants of concern (VOC) and compared them with the antiviral efficacy of these drugs against the SARS-CoV-2 reference strain (hCoV/Korea/KCDC03/2020). Maximal IC 50 fold changes of remdesivir, molnupiravir, and nirmatrelvir were 1.9- (BA.2.75.2), 1.2-(B.1.627.2), and 1.4-fold (BA.2.3), respectively, compared to median IC 50 values of the reference strain. Moreover, median IC 50 -fold changes of remdesivir, molnupiravir, and nirmatrelvir against the Omicron variants were 0.96, 0.4, and 0.62, similar to 1.02, 0.88, and 0.67, respectively, of median IC 50 -fold changes for previous VOC. Although K90R and P132H in Nsp 5, and P323L, A529V, G671S, V405F, and ins823D in Nsp 12 mutations were identified, these amino acid substitutions did not affect drug antiviral activity. Altogether, these results indicated that the current antivirals retain antiviral efficacy against newly emerged Omicron subvariants, and provide comprehensive information on the antiviral efficacy of these drugs.

Background Although recommended isolation periods for Coronavirus disease 2019 (COVID-19) have been shortened as the pandemic has subsided, prolonged Severe Acute Respiratory Syndrome-Coronavirus-2 (SARS-CoV-2) shedding remains common in immunocompromised patients. This study estimated the probability of viral clearance in these patients based on elapsed days and specific risk factors.