Background. Severe fever with thrombocytopenia syndrome (SFTS) is caused by SFTS virus (SFTSV), a novel bunyavirus reported to be endemic in central and northeastern China. This article describes the first identified patient with SFTS and a retrospective study on SFTS in Japan.

Abstract The coronavirus disease 2019 (COVID-19), caused by severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2), is a global pandemic that began in December 2019. Lymphopenia is a common feature in severe cases of COVID-19; however, the role of T cell responses during infection is unclear. Here, we inoculated six cynomolgus monkeys, divided into two groups according to the CD3+ T cell population in peripheral blood, with two clinical isolates of SARS-CoV-2: one of East Asian lineage and one of European lineage. After initial infection with the isolate of East Asian lineage, all three monkeys in the CD3+ low group showed clinical symptoms, including loss of appetite, lethargy, and transient severe anemia with/without short-term fever, within 14 days post-infection (p.i.). By contrast, all three monkeys in the CD3+ high group showed mild clinical symptoms such as mild fever and loss of appetite within 4 days p.i. and then recovered. After a second inoculation with the isolate of European lineage, three of four animals in both groups showed mild clinical symptoms but recovered quickly. Hematological, immunological, and serological tests suggested that the CD3+ high and low groups mounted different immune responses during the initial and second infection stages. In both groups, anti-viral and innate immune responses were activated during the early phase of infection and re-infection. However, in the CD3+ low group, inflammatory responses, such as increased production of monocytes and neutrophils, were stronger than those in the CD3+ high group, leading to more severe immunopathology and failure to eliminate the virus. Taken together, the data suggest that the peripheral T lymphocyte population is associated with pneumonia severity in cynomolgus monkeys experimentally infected with SARS-CoV-2. Author summary SARS-CoV-2 infection causes an illness with clinical manifestations that vary from asymptomatic or mild to severe; examples include severe pneumonia and acute respiratory distress syndrome. Lymphopenia, which is common in severe COVID-19 cases, is characterized by markedly reduced numbers of CD4+ T cells, CD8+ T cells, B cells, and natural killer cells. Here, we showed that cynomolgus monkeys selected according to the T cell populations in peripheral blood have different outcomes after experimental infection with SARS-CoV-2. These findings will increase our understanding of disease pathogenesis and may facilitate the development of animal models for vaccine evaluation.

Abstract SARS-CoV-2 is a novel coronavirus that emerged in 2019 and is now classified in the genus Coronavirus with closely related SARS-CoV. SARS-CoV-2 is highly pathogenic in humans and is classified as a biosafety level (BSL)-3 pathogen, which makes manipulating it relatively difficult due to its infectious nature. To circumvent the need for BSL-3 laboratories, an alternative assay was developed that avoids live virus and instead uses a recombinant VSV expressing luciferase and possesses the full length or truncated spike proteins of SARS-CoV-2. Furthermore, to measure SARS-CoV-2 neutralizing antibodies under BSL2 conditions, a chemiluminescence reduction neutralization test (CRNT) for SARS-CoV-2 was developed. The neutralization values of the serum samples collected from hospitalized patients with COVID-19 or SARS-CoV-2 PCR-negative donors against the pseudotyped virus infection evaluated by the CRNT were compared with antibody titers determined from an immunofluorescence assay (IFA). The CRNT, which used whole blood collected from hospitalized patients with COVID-19, was also examined. As a result, the inhibition of pseudotyped virus infection was specifically observed in both serum and whole blood and was also correlated with the results of the IFA. In conclusion, the CRNT for COVID-19 is a convenient assay system that can be performed in a BSL-2 laboratory with high specificity and sensitivity for evaluating the occurrence of neutralizing antibodies against SARS-CoV-2.

Abstract Severe fever with thrombocytopenia syndrome (SFTS) caused by Dabie bandavirus (formerly SFTS virus [SFTSV]) is an emerging hemorrhagic infectious disease with a high case-fatality rate. One of the best strategies for preventing SFTS is to develop a vaccine, which is expected to induce both humoral and cellular immunity. We applied a highly attenuated but still immunogenic vaccinia virus strain LC16m8 (m8) as a recombinant vaccine for SFTS. Recombinant m8s expressing SFTSV nucleoprotein (m8-N), envelope glycoprotein precursor (m8-GPC), and both N and GPC (m8-N+GPC) in the infected cells were generated. Both m8-GPC- and m8-N+GPC-infected cells were confirmed to produce SFTSV-like-particles (VLP) in vitro , and the N was incorporated in the VLP produced by the infection of cells with m8-N+GPC. Specific antibodies to SFTSV were induced in mice inoculated with each of the recombinant m8s, and the mice were fully protected from lethal challenge with SFTSV at both 10 3 TCID 50 and 10 5 TCID 50 . In mice that had been immunized with vaccinia virus strain Lister in advance of m8-based SFTSV vaccine inoculation, protective immunity against the SFTSV challenge was also conferred. The pathological analysis revealed that mice immunized with m8-GPC or m8-N+GPC did not show any histopathological changes without any viral antigen-positive cells, whereas the control mice showed focal necrosis with inflammatory infiltration with SFTSV antigen-positive cells in tissues after SFTSV challenge. The passive serum transfer experiments revealed that sera collected from mice inoculated with m8-GPC or m8-N+GPC but not with m8-N conferred protective immunity against lethal SFTSV challenge in naïve mice. On the other hand, the depletion of CD8-positive cells in vivo did not abrogate the protective immunity conferred by m8-based SFTSV vaccines. Based on these results, the recombinant m8-GPC and m8-N+GPC were considered promising vaccine candidates for SFTS. Author Summary Severe fever with thrombocytopenia syndrome (SFTS) is an emerging viral hemorrhagic fever with a high case-fatality rate (approximately 5% to >40%). Indigenous SFTS has been reported in China, Japan, South Korea, and Vietnam. Thus, the development of an effective vaccine for SFTS is urgently needed. Vaccinia virus (VAC) was previously used as a vaccine for smallpox. Unfortunately, after these strains, the so-called second generation of VAC used during the eradication campaign was associated with severe adverse events, and the third generation of VAC strains such as LC16m8 (m8) and modified vaccinia Ankara (MVA) was established. m8 is confirmed to be highly attenuated while still maintaining immunogenicity. m8 is licensed for use in healthy people in Japan. At the present time, approximately 100,000 people have undergone vaccination with m8 without experiencing any severe postvaccine complications. At present, third-generation VAC strains are attractive for a recombinant vaccine vector, especially for viral hemorrhagic infectious diseases, such as Ebola virus disease, Lassa fever, Crimean-Congo hemorrhagic fever, and SFTS. We investigated the practicality of an m8-based recombinant vaccine for SFTS as well as other promising recombinant VAC-based vaccines for viral hemorrhagic infectious diseases.

Background Severe fever with thrombocytopenia syndrome (SFTS), caused by SFTS virus (SFTSV), is a viral hemorrhagic fever with a high case fatality rate. Favipiravir was reported to be effective in the treatment of SFTSV infection in vivo in type I interferon receptor knockout (IFNAR−/−) mice at treatment dosages of both 60 mg/kg/day and 300 mg/kg/day for a duration of 5 days. Methods In this study, the efficacy of favipiravir at dosages of 120 mg/kg/day and 200 mg/kg/day against SFTSV infection in an IFNAR−/− mouse infection model was investigated. IFNAR−/− mice were subcutaneously infected with SFTSV at a 1.0 × 106 50% tissue culture infectious dose followed by twice daily administration of favipiravir, comprising a total dose of either 120 mg/kg/day or 200 mg/kg/day. The treatment was initiated either immediately post infection or at predesignated time points post infection. Results All mice treated with favipiravir at dosages of 120 mg/kg/day or 200 mg/kg/day survived when the treatment was initiated at no later than 4 days post infection. A decrease in body weight of mice was observed when the treatment was initiated at 3–4 days post infection. Furthermore, all control mice died. The body weight of mice did not decrease when treatment with favipiravir was initiated immediately post infection at dosages of 120 mg/kg/day and 200 mg/kg/day. Conclusions Similar to the literature-reported peritoneal administration of favipiravir at 300 mg/kg/day, the oral administration of favipiravir at dosages of 120 mg/kg/day and 200 mg/kg/day to IFNAR−/− mice infected with SFTSV was effective.

Lymphocytic choriomeningitis virus (LCMV) is a prototypic arenavirus. The viral genome consists of two RNA segments, L and S. The 5'- and 3'-termini of both L and S segments are highly conserved among arenaviruses. These regions consist of 19 complementary base pairs and are essential for viral genome replication and transcription. In addition to these 19 nucleotides in the 5'- and 3'-termini, there are untranslated regions (UTRs) composed of 58 and 41 nucleotide residues in the 5' and 3' UTRs, respectively, in the LCMV S segment. Their functional roles, however, have yet to be elucidated. In this study, a reverse genetics and a minigenome system for the LCMV strain WE were established and used to analyze the function of these regions. The results obtained from these analyses, plus RNA secondary structure prediction, revealed that not only these 19 nucleotides but also the 20th–40th and 20th–38th nucleotides located downstream of the 19 nucleotides in the 5'- and 3'-termini, respectively, are heavily involved in viral genome replication and transcription. Furthermore, the introduction of mutations in these regions depressed viral propagation in vitro and enhanced attenuation in vivo. Conversely, recombinant LCMVs (rLCMVs), which had various deletions in the other UTRs, propagated as well as wild-type LCMV in vitro but were attenuated in vivo. Most mice previously infected with rLCMVs with mutated UTRs, when further infected with a lethal dose of wild-type LCMV, survived. These results suggest that rLCMVs with mutated UTRs could be candidates for an LCMV vaccine.

Antiviral treatments targeting the emerging coronavirus disease 2019 (COVID-19) are urgently required. We screened a panel of already-approved drugs in a cell culture model of severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) and identified two new antiviral agents: the HIV protease inhibitor Nelfinavir and the anti-inflammatory drug Cepharanthine. In silico modeling shows Nelfinavir binds the SARS-CoV-2 main protease consistent with its inhibition of viral replication, whilst Cepharanthine inhibits viral attachment and entry into cells. Consistent with their different modes of action, in vitro assays highlight a synergistic effect of this combined treatment to limit SARS-CoV-2 proliferation. Mathematical modeling in vitro antiviral activity coupled with the known pharmacokinetics for these drugs predicts that Nelfinavir will facilitate viral clearance. Combining Nelfinavir/Cepharanthine enhanced their predicted efficacy to control viral proliferation, to ameliorate both the progression of disease and risk of transmission. In summary, this study identifies a new multidrug combination treatment for COVID-19.### Competing Interest StatementThe authors have declared no competing interest.

Abstract Background Severe fever with thrombocytopenia syndrome virus (SFTSV) causes severe hemorrhagic fever in humans and cats. Clinical symptoms of SFTS-infected cats resemble to those of SFTS patients and SFTS-contracted cats shows high levels of viral RNA loads in the serum and body fluids. Due to the risk of direct infection from SFTS-infected cats to human, it is important to diagnose SFTS-suspected animals. Methodology/Principle findings Four primer sets were newly designed from consensus sequences constructed by 108 strains of SFTSV. A reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) with these four primer sets were successfully and specifically detected several clades of SFTSV. Their limits of detection are 1-10 copies/reaction. By this RT-PCR, 5 cat cases among 56 SFTS-suspected animal cases were diagnosed as SFTS. From these cats, IgM or IgG against SFTSV were detected by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), but not neutralizing antibodies by plaque reduction neutralization titer (PRNT) test. This phenomenon is similar to those of fatal SFTS patients. Conclusion/Significance This newly developed RT-PCR could detect SFTSV RNA of several clades from SFTS-suspected animals. In addition to ELISA and PRNT test, the useful laboratory diagnosis systems of SFTS-suspected animals has been made in this study. Author summary This study developed RT-PCR to detect SFTS animal cases. This assay could detect SFTSV RNA belonging to different clades. Cats diagnosed as SFTS had IgM or IgG, but not neutralizing antibodies. SFTS cat cases were distributed in the area where SFTS patients have been reported highly, indicating the establishment of the circulation of SFTSV in the environment. These diagnostic assays could be helpful tools to detect and not to miss SFTS animal cases.

We detected influenza A(H1N1)pdm09 viruses carrying dual H275Y/I223R, H275Y/I223K, or H275Y/G147R substitutions in their neuraminidase protein, respectively. These viruses showed cross-resistance to oseltamivir and peramivir and reduced susceptibility to zanamivir. The H275Y/G147R virus retained its replication capability at least in vitro, but the H275Y/I223R and H275Y/I223K viruses did not.

Abstract The antigenicity of SARS-CoV-2 is a critical issue for the effectiveness of the vaccine, and thus it should be phenotypically evaluated by serological assays as new field isolates emerge. The hemagglutination/hemagglutination-inhibition (HA/HI) tests are well-known as a representative method for antigenic analysis of influenza viruses, but SARS-CoV-2 is unlikely to agglutinate to human or guinea pig red blood cells. Therefore, the antigenic analysis requires complicated enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) or cell-based assays such as the microneutralization assay. In this study, we developed the particle agglutination/particle agglutination-inhibition (PA/PAI) test to easily and rapidly quantify the virus and antibody using human angiotensin-converting enzyme 2 (hACE2)-bound latex beads. The PA titer was positively correlated with the plaque-forming units. The PAI titer using post-infection Syrian hamster antisera clearly revealed the antigenic difference between the omicron and previous variants. The results show the PAI test is useful for easy and rapid antigenic analysis of SARS-CoV-2.