The SARS-CoV-2 Omicron 1 Variant of Concern (B.1.1.529) has spread rapidly in many countries. With a spike that is highly diverged from that of the pandemic founder, it escapes most available monoclonal antibody therapeutics 2,3 and erodes vaccine protection 4 . A public class of IGHV3-53-using SARS-CoV-2 neutralizing antibodies 5,6 typically fails to neutralize variants carrying mutations in the receptor-binding motif 7–11 , including Omicron. As antibodies from this class are likely elicited in most people following SARS-CoV-2 infection or vaccination, their subsequent affinity maturation is of particular interest. Here, we isolated IGHV3-53-using antibodies from an individual seven months after infection and identified several antibodies capable of broad and potent SARS-CoV-2 neutralization, extending to Omicron without loss of potency. By introducing select somatic hypermutations into a germline-reverted form of one such antibody, CAB-A17, we demonstrate the potential for commonly elicited antibodies to develop broad cross-neutralization through affinity maturation. Further, we resolved the structure of CAB-A17 Fab in complex with Omicron spike at an overall resolution of 2.6 Å by cryo-electron microscopy and defined the structural basis for this breadth. Thus, public SARS-CoV-2 neutralizing antibodies can, without modified spike vaccines, mature to cross-neutralize exceptionally antigenically diverged SARS-CoV-2 variants.

Abstract An emerging SARS-CoV-2 Omicron sublineage, BA.2.75, is increasing in frequency in India and has been detected in at least 15 countries as of 19 July 2022. Relative to BA.2, BA.2.75 carries nine additional mutations in spike. Here we report the sensitivity of the BA.2.75 spike to neutralization by a panel of clinically-relevant and pre-clinical monoclonal antibodies, as well as by serum from blood donated in Stockholm, Sweden, before and after the BA.1/BA.2 infection wave. BA.2.75 largely maintains sensitivity to bebtelovimab, despite a slight reduction in potency, and exhibits moderate susceptibility to tixagevimab and cilgavimab. For sera sampled both before and after the BA.1/BA.2 infection wave, BA.2.75 does not show significantly greater antibody evasion than the currently-dominating BA.5.

The outbreak and spread of SARS-CoV-2 (Severe Acute Respiratory Syndrome coronavirus 2), the cause of coronavirus disease 2019 (COVID-19), is a current global health emergency and a prophylactic vaccine is needed urgently. The spike glycoprotein of SARS-CoV-2 mediates entry into host cells, and thus is a target for neutralizing antibodies and vaccine design. Here we show that adjuvanted protein immunization with SARS-CoV-2 spike trimers, stabilized in prefusion conformation, results in potent antibody responses in mice and rhesus macaques with neutralizing antibody titers orders of magnitude greater than those typically measured in serum from SARS-CoV-2 seropositive humans. Neutralizing antibody responses were observed after a single dose, with exceptionally high titers achieved after boosting. Furthermore, neutralizing antibody titers elicited by a dose-sparing regimen in mice were similar to those obtained from a high dose regimen. Taken together, these data strongly support the development of adjuvanted SARS-CoV-2 prefusion-stabilized spike protein subunit vaccines.

Abstract The recently-emerged SARS-CoV-2 B.1.1.529 variant (Omicron) is spreading rapidly in many countries, with a spike that is highly diverged from the pandemic founder, raising fears that it may evade neutralizing antibody responses. We cloned the Omicron spike from a diagnostic sample which allowed us to rapidly establish an Omicron pseudotyped virus neutralization assay, sharing initial neutralization results only 13 days after the variant was first reported to the WHO, 8 days after receiving the sample. Here we show that Omicron is substantially resistant to neutralization by several monoclonal antibodies that form part of clinical cocktails. Further, we find neutralizing antibody responses in pooled reference sera sampled shortly after infection or vaccination are substantially less potent against Omicron, with neutralizing antibody titers reduced by up to 45 fold compared to those for the pandemic founder. Similarly, in a cohort of convalescent sera prior to vaccination, neutralization of Omicron was low to undetectable. However, in recent samples from two cohorts from Stockholm, Sweden, antibody responses capable of cross-neutralizing Omicron were prevalent. Sera from infected-then-vaccinated healthcare workers exhibited robust cross-neutralization of Omicron, with an average potency reduction of only 5-fold relative to the pandemic founder variant, and some donors showing no loss at all. A similar pattern was observed in randomly sampled recent blood donors, with an average 7-fold loss of potency. Both cohorts showed substantial between-donor heterogeneity in their ability to neutralize Omicron. Together, these data highlight the extensive but incomplete evasion of neutralizing antibody responses by the Omicron variant, and suggest that increasing the magnitude of neutralizing antibody responses by boosting with unmodified vaccines may suffice to raise titers to levels that are protective.

Abstract Several sublineages of omicron have emerged with additional mutations that may afford further antibody evasion. Here, we characterise the sensitivity of emerging omicron sublineages BA.2.75.2, BA.4.6, and BA.2.10.4 to antibody-mediated neutralisation, and identify extensive escape by BA.2.75.2. BA.2.75.2 was resistant to neutralisation by Evusheld (tixagevimab + cilgavimab), but remained sensitive to bebtelovimab. In recent serum samples from blood donors in Stockholm, Sweden, BA.2.75.2 was neutralised, on average, at titers approximately 6.5-times lower than BA.5, making BA.2.75.2 the most neutralisation resistant variant evaluated to date. These data raise concerns that BA.2.75.2 may effectively evade humoral immunity in the population.

A bstract Systematic differences between batches of samples present significant challenges when analysing biological data. Such batch effects are well-studied and are liable to occur in any setting where multiple batches are assayed. Many existing methods for accounting for these have focused on high-dimensional data such as RNA-seq and have assumptions that reflect this. Here we focus on batch-correction in low-dimensional classification problems. We propose a semi-supervised Bayesian generative classifier based on mixture models that jointly predicts class labels and models batch effects. Our model allows observations to be probabilistically assigned to classes in a way that incorporates uncertainty arising from batch effects. By simultaneously inferring the classification and the batch-correction our method is more robust to dependence between batch and class than pre-processing steps such as ComBat. We explore two choices for the within-class densities: the multivariate normal and the multivariate t . A simulation study demonstrates that our method performs well compared to popular off-the-shelf machine learning methods and is also quick; performing 15,000 iterations on a dataset of 750 samples with 2 measurements each in 11.7 seconds for the MVN mixture model and 14.7 seconds for the MVT mixture model. We further validate our model on gene expression data where cell type (class) is known and simulate batch effects. We apply our model to two datasets generated using the enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), a spectrophotometric assay often used to screen for antibodies. The examples we consider were collected in 2020 and measure seropositivity for SARS-CoV-2. We use our model to estimate seroprevalence in the populations studied. We implement the models in C++ using a Metropolis-within-Gibbs algorithm, available in the R package batchmix . Scripts to recreate our analysis are at https://github.com/stcolema/BatchClassifierPaper .

Abstract The human T cell receptor (TCR) genes are critical for mediating immune responses to pathogens, tumors and regulating self-antigen recognition. A detailed analysis and validation of expressed TCR alpha, beta, gamma, and delta genes in 45 donors from 4 human populations: African, East Asian, South Asian, and European, revealed a total of 175 novel TCR variable and junctional alleles. The majority of novel alleles contained coding changes and were present at widely differing frequencies in the populations, a finding confirmed using DNA samples and sequences from the 1000 Genomes Project. Importantly, we identified three Neanderthal-derived, introgressed TCR regions, including a highly divergent novel TRGV4 variant, present in all archaic assemblies, that was frequent in all modern Eurasian population groups. Our results demonstrate significant variation in TCR genes at both individual and population levels, providing a strong incentive for including allelic variation in studies of TCR function in human biology.

Abstract Understanding the molecular mechanisms by which antibodies target and neutralize the HIV-1 envelope glycoprotein (Env) is critical in guiding immunogen design and vaccine development aimed at eliciting cross-reactive neutralizing antibodies (NAbs). Here, we analyzed monoclonal antibodies (mAbs) isolated from non-human primates (NHPs) immunized with variants of a native flexibly linked (NFL) HIV-1 Env stabilized trimer derived from the tier 2 clade C 16055 strain. The antibodies displayed neutralizing activity against the autologous virus with potencies ranging from 0.005 to 3.68 ug/ml (IC 50 ). Structural characterization using negative-stain EM and X-ray crystallography identified the variable region 2 (V2) of the 16055 NFL trimer to be the common epitope for these antibodies. The crystal structures revealed that the V2 segment adopts a β-hairpin motif identical to that observed in the 16055 NFL crystal structure. These results depict how vaccine-induced antibodies derived from different clonal lineages penetrate through the glycan shield to recognize a hypervariable region within V2 (residues 184-186) that is unique to the 16055 strain. They also provide an explanation for the potent autologous neutralization of these antibodies, confirming the immunodominance of this site and revealing that multiple angles of approach are permissible for affinity/avidity that results in potent neutralizing capacity. The structural analysis reveals that the most negatively charged paratope correlated with the potency of the mAbs. The atomic level information is of interest to both define the means of autologous neutralization elicited by different tier 2-based immunogens and facilitate trimer redesign to better target more conserved regions of V2 to potentially elicit cross-neutralizing HIV-1 antibodies. Author summary NHPs immunizations with an HIV-1 immunogen (native-like tier 2 clade C 16055 strain) elicit potent HIV-1 tier 2 autologous polyclonal neutralizing antibodies. To understand the basis of the autologous neutralization, we determined structures of antibodies isolated from the vaccinated NHPs in complex with their epitopes. Our structural analysis reveals that the V2 hypervariable region, unique to 16055, is immunodominant and targeted by antibodies from diverse lineages. Additionally, vaccine-elicited V2 NAbs use different binding angles to avoid Env N-glycan shield and the more negatively charged paratope displays potent autologous neutralizing function. In summary, detailed analysis of how vaccine-elicited monoclonal antibodies interact with the target antigen provide valuable information for the design of immunogens aimed to elicit more broadly HIV-neutralizing antibodies. The use of cocktail/prime-boost sequential regimens that include a range of sequence variation combined with the removal/shielding of unwanted immunodominant epitopes will likely be needed to reach this goal.

The emergence of SARS-CoV-2 Variants of Concern (VOCs) with mutations in key neutralizing antibody epitopes threatens to undermine vaccines developed against the pandemic founder variant (Wu-Hu-1). Widespread vaccine rollout and continued transmission are creating a population that has antibody responses of varying potency to Wu-Hu-1. Against this background, it is critical to assess the outcomes of subsequent immunization with variant antigens. It is not yet known whether heterotypic vaccine boosts would be compromised by original antigenic sin, where pre-existing responses to a prior variant dampen responses to a new one, or whether the primed memory B cell repertoire would bridge the gap between Wu-Hu-1 and VOCs. Here, we show that a single adjuvanted dose of receptor binding domain (RBD) protein from VOC 501Y.V2 (B.1.351) drives an extremely potent neutralizing antibody response capable of cross-neutralizing both Wu-Hu-1 and 501Y.V2 in rhesus macaques previously immunized with Wu-Hu-1 spike protein. Passive immunization with plasma sampled following this boost protected K18-hACE2 mice from lethal challenge with a 501Y.V2 clinical isolate, whereas only partial protection was afforded by plasma sampled after two Wu-Hu-1 spike immunizations.

Recognition of antigens by T cell receptors (TCRs) and B cell receptors (BCRs) is a key step in lymphocyte activation. T and B cells mediate adaptive immune responses, which protect us against infections and provide immunological memory, and also, in some instances, drive pathogenic responses in autoimmune diseases. TCRs and BCRs are encoded within loci that are known to be genetically diverse. However, the extent and functional impact of this variation, both in humans and model animals used in immunological research, remain largely unknown. Experimental and genetic evidence has demonstrated that the complementarity determining regions 1 and 2 (HCDR1 and HCDR2), encoded by the variable (V) region of TCRs and BCRs, also often make critical contacts with the targeted antigen. Thus, knowledge about allelic variation in the genes encoding TCRs and BCRs is critically important for understanding adaptive immune responses in outbred populations and to define responder and non-responder phenotypes.