COSMIC ( http://www.sanger.ac.uk/cosmic ) curates comprehensive information on somatic mutations in human cancer. Release v48 (July 2010) describes over 136 000 coding mutations in almost 542 000 tumour samples; of the 18 490 genes documented, 4803 (26%) have one or more mutations. Full scientific literature curations are available on 83 major cancer genes and 49 fusion gene pairs (19 new cancer genes and 30 new fusion pairs this year) and this number is continually increasing. Key amongst these is TP53, now available through a collaboration with the IARC p53 database. In addition to data from the Cancer Genome Project (CGP) at the Sanger Institute, UK, and The Cancer Genome Atlas project (TCGA), large systematic screens are also now curated. Major website upgrades now make these data much more mineable, with many new selection filters and graphics. A Biomart is now available allowing more automated data mining and integration with other biological databases. Annotation of genomic features has become a significant focus; COSMIC has begun curating full-genome resequencing experiments, developing new web pages, export formats and graphics styles. With all genomic information recently updated to GRCh37, COSMIC integrates many diverse types of mutation information and is making much closer links with Ensembl and other data resources.

Epilepsy and mental retardation limited to females (EFMR) is a disorder with an X-linked mode of inheritance and an unusual expression pattern. Disorders arising from mutations on the X chromosome are typically characterized by affected males and unaffected carrier females. In contrast, EFMR spares transmitting males and affects only carrier females. Aided by systematic resequencing of 737 X chromosome genes, we identified different protocadherin 19 (PCDH19) gene mutations in seven families with EFMR. Five mutations resulted in the introduction of a premature termination codon. Study of two of these demonstrated nonsense-mediated decay of PCDH19 mRNA. The two missense mutations were predicted to affect adhesiveness of PCDH19 through impaired calcium binding. PCDH19 is expressed in developing brains of human and mouse and is the first member of the cadherin superfamily to be directly implicated in epilepsy or mental retardation.

SUMMARY Mutational signature analysis is commonly performed in genomic studies surveying cancer and normal somatic tissues. Here we present SigProfilerExtractor, an automated tool for accurate de novo extraction of mutational signatures for all types of somatic mutations. Benchmarking with a total of 34 distinct scenarios encompassing 2,500 simulated signatures operative in more than 60,000 unique synthetic genomes and 20,000 synthetic exomes demonstrates that SigProfilerExtractor outperforms thirteen other tools across all datasets with and without noise. For genome simulations with 5% noise, reflecting high-quality genomic datasets, SigProfilerExtractor outperforms other approaches by elucidating between 20% and 50% more true positive signatures while yielding more than 5-fold less false positive signatures. Applying SigProfilerExtractor to 4,643 whole-genome sequenced and 19,184 whole-exome sequenced cancers reveals four previously missed mutational signatures. Two of the signatures are confirmed in independent cohorts with one of these signatures associating with tobacco smoking. In summary, this report provides a reference tool for analysis of mutational signatures, a comprehensive benchmarking of bioinformatics tools for extracting mutational signatures, and several novel mutational signatures including a signature putatively attributed to direct tobacco smoking mutagenesis in bladder cancer and in normal bladder epithelium.

As next-generation sequencing becomes a clinical tool, a full understanding of the variables affecting sequencing analysis output is required. Through the International Cancer Genome Consortium (ICGC), we compared sequencing pipelines at five independent centers (CNAG, DKFZ, OICR, RIKEN and WTSI) using a single tumor-blood DNA pair. Analyses by each center and with one standardized algorithm revealed significant discrepancies. Although most pipelines performed well for coding mutations, library preparation methods and sequencing coverage metrics clearly influenced downstream results. PCR-free methods showed reduced GC-bias and more even coverage. Increasing sequencing depth to ~100x (two- to three-fold higher than current standards) showed a benefit, as long as the tumor:control coverage ratio remained balanced. To become part of routine clinical care, high-throughput sequencing must be globally compatible and comparable. This benchmarking exercise has highlighted several fundamental parameters to consider in this regard, which will allow for better optimization and planning of both basic and translational studies.