The prior diagnosis of fatal astrocytoma in a 60-year-old man with Crohn's disease treated with natalizumab, a monoclonal antibody against alpha4 integrins, was reclassified as JC virus-related progressive multifocal leukoencephalopathy (PML). Analysis of frozen serum samples showed that JC virus DNA had appeared in the serum three months after the initiation of open-label natalizumab monotherapy and two months before the appearance of symptomatic PML. There was staining of the brain lesion for polyomavirus. This case report, along with two others, suggests that anti-alpha4-integrin therapy can result in JC virus-induced PML.

In April 2008, a nucleotide-sequence-based, complete genome classification system was developed for group A rotaviruses (RVs). This system assigns a specific genotype to each of the 11 genome segments of a particular RV strain according to established nucleotide percent cutoff values. Using this approach, the genome of individual RV strains are given the complete descriptor of Gx-P[x]-Ix-Rx-Cx-Mx-Ax-Nx-Tx-Ex-Hx. The Rotavirus Classification Working Group (RCWG) was formed by scientists in the field to maintain, evaluate and develop the RV genotype classification system, in particular to aid in the designation of new genotypes. Since its conception, the group has ratified 51 new genotypes: as of April 2011, new genotypes for VP7 (G20-G27), VP4 (P[28]-P[35]), VP6 (I12-I16), VP1 (R5-R9), VP2 (C6-C9), VP3 (M7-M8), NSP1 (A15-A16), NSP2 (N6-N9), NSP3 (T8-T12), NSP4 (E12-E14) and NSP5/6 (H7-H11) have been defined for RV strains recovered from humans, cows, pigs, horses, mice, South American camelids (guanaco), chickens, turkeys, pheasants, bats and a sugar glider. With increasing numbers of complete RV genome sequences becoming available, a standardized RV strain nomenclature system is needed, and the RCWG proposes that individual RV strains are named as follows: RV group/species of origin/country of identification/common name/year of identification/G- and P-type. In collaboration with the National Center for Biotechnology Information (NCBI), the RCWG is also working on developing a RV-specific resource for the deposition of nucleotide sequences. This resource will provide useful information regarding RV strains, including, but not limited to, the individual gene genotypes and epidemiological and clinical information. Together, the proposed nomenclature system and the NCBI RV resource will offer highly useful tools for investigators to search for, retrieve, and analyze the ever-growing volume of RV genomic data.

ABSTRACT Group A rotavirus classification is currently based on the molecular properties of the two outer layer proteins, VP7 and VP4, and the middle layer protein, VP6. As reassortment of all the 11 rotavirus gene segments plays a key role in generating rotavirus diversity in nature, a classification system that is based on all the rotavirus gene segments is desirable for determining which genes influence rotavirus host range restriction, replication, and virulence, as well as for studying rotavirus epidemiology and evolution. Toward establishing such a classification system, gene sequences encoding VP1 to VP3, VP6, and NSP1 to NSP5 were determined for human and animal rotavirus strains belonging to different G and P genotypes in addition to those available in databases, and they were used to define phylogenetic relationships among all rotavirus genes. Based on these phylogenetic analyses, appropriate identity cutoff values were determined for each gene. For the VP4 gene, a nucleotide identity cutoff value of 80% completely correlated with the 27 established P genotypes. For the VP7 gene, a nucleotide identity cutoff value of 80% largely coincided with the established G genotypes but identified four additional distinct genotypes comprised of murine or avian rotavirus strains. Phylogenetic analyses of the VP1 to VP3, VP6, and NSP1 to NSP5 genes showed the existence of 4, 5, 6, 11, 14, 5, 7, 11, and 6 genotypes, respectively, based on nucleotide identity cutoff values of 83%, 84%, 81%, 85%, 79%, 85%, 85%, 85%, and 91%, respectively. In accordance with these data, a revised nomenclature of rotavirus strains is proposed. The novel classification system allows the identification of (i) distinct genotypes, which probably followed separate evolutionary paths; (ii) interspecies transmissions and a plethora of reassortment events; and (iii) certain gene constellations that revealed (a) a common origin between human Wa-like rotavirus strains and porcine rotavirus strains and (b) a common origin between human DS-1-like rotavirus strains and bovine rotaviruses. These close evolutionary links between human and animal rotaviruses emphasize the need for close simultaneous monitoring of rotaviruses in animals and humans.

Recently, a classification system was proposed for rotaviruses in which all the 11 genomic RNA segments are used (Matthijnssens et al. in J Virol 82:3204–3219, 2008). Based on nucleotide identity cut-off percentages, different genotypes were defined for each genome segment. A nomenclature for the comparison of complete rotavirus genomes was considered in which the notations Gx-P[x]-Ix-Rx-Cx-Mx-Ax-Nx-Tx-Ex-Hx are used for the VP7-VP4-VP6-VP1-VP2-VP3-NSP1-NSP2-NSP3-NSP4-NSP5/6 encoding genes, respectively. This classification system is an extension of the previously applied genotype-based system which made use of the rotavirus gene segments encoding VP4, VP7, VP6, and NSP4. In order to assign rotavirus strains to one of the established genotypes or a new genotype, a standard procedure is proposed in this report. As more human and animal rotavirus genomes will be completely sequenced, new genotypes for each of the 11 gene segments may be identified. A Rotavirus Classification Working Group (RCWG) including specialists in molecular virology, infectious diseases, epidemiology, and public health was formed, which can assist in the appropriate delineation of new genotypes, thus avoiding duplications and helping minimize errors. Scientists discovering a potentially new rotavirus genotype for any of the 11 gene segments are invited to send the novel sequence to the RCWG, where the sequence will be analyzed, and a new nomenclature will be advised as appropriate. The RCWG will update the list of classified strains regularly and make this accessible on a website. Close collaboration with the Study Group Reoviridae of the International Committee on the Taxonomy of Viruses will be maintained.

We report on chloroquine, a 4-amino-quinoline, as an effective inhibitor of the replication of the severe acute respiratory syndrome coronavirus (SARS-CoV) in vitro. Chloroquine is a clinically approved drug effective against malaria. We tested chloroquine phosphate for its antiviral potential against SARS-CoV-induced cytopathicity in Vero E6 cell culture. Results indicate that the IC50 of chloroquine for antiviral activity (8.8 +/- 1.2 microM) was significantly lower than its cytostatic activity; CC50 (261.3 +/- 14.5 microM), yielding a selectivity index of 30. The IC50 of chloroquine for inhibition of SARS-CoV in vitro approximates the plasma concentrations of chloroquine reached during treatment of acute malaria. Addition of chloroquine to infected cultures could be delayed for up to 5h postinfection, without an important drop in antiviral activity. Chloroquine, an old antimalarial drug, may be considered for immediate use in the prevention and treatment of SARS-CoV infections.

In the WHO European Region, COVID-19 surveillance was implemented 27 January 2020. We detail the first European cases. As at 21 February, nine European countries reported 47 cases. Among 38 cases studied, 21 were linked to two clusters in Germany and France, 14 were infected in China. Median case age was 42 years; 25 were male. Late detection of the clusters’ index cases delayed isolation of further local cases. As at 5 March, there were 4,250 cases.

ABSTRACT Coronaviruses are enveloped, positive-stranded RNA viruses with a genome of approximately 30 kb. Based on genetic similarities, coronaviruses are classified into three groups. Two group 2 coronaviruses, human coronavirus OC43 (HCoV-OC43) and bovine coronavirus (BCoV), show remarkable antigenic and genetic similarities. In this study, we report the first complete genome sequence (30,738 nucleotides) of the prototype HCoV-OC43 strain (ATCC VR759). Complete genome and open reading frame (ORF) analyses were performed in comparison to the BCoV genome. In the region between the spike and membrane protein genes, a 290-nucleotide deletion is present, corresponding to the absence of BCoV ORFs ns4.9 and ns4.8. Nucleotide and amino acid similarity percentages were determined for the major HCoV-OC43 ORFs and for those of other group 2 coronaviruses. The highest degree of similarity is demonstrated between HCoV-OC43 and BCoV in all ORFs with the exception of the E gene. Molecular clock analysis of the spike gene sequences of BCoV and HCoV-OC43 suggests a relatively recent zoonotic transmission event and dates their most recent common ancestor to around 1890. An evolutionary rate in the order of 4 × 10 −4 nucleotide changes per site per year was estimated. This is the first animal-human zoonotic pair of coronaviruses that can be analyzed in order to gain insights into the processes of adaptation of a nonhuman coronavirus to a human host, which is important for understanding the interspecies transmission events that led to the origin of the severe acute respiratory syndrome outbreak.

Group A rotaviruses are the most common cause of severe diarrhea in infants and children worldwide and continue to have a major global impact on childhood morbidity and mortality. In recent years, considerable research efforts have been devoted to the development of two new live, orally administered vaccines. Although both vaccines have proven to confer a good protection against severe rotavirus gastroenteritis, these vaccines will have to be screened and may have to be updated regularly to reflect temporal and spatial genotype fluctuations. In this matter, the genetic characterization of circulating and new emerging rotavirus strains will need to be compulsory and accurate. An extended classification system for rotaviruses in which all the 11 genomic RNA segments are used, has been proposed recently. The use of this classification system will help to elucidate the role of gene reassortments in the generation of genetic diversity, host range restriction, co-segregation of certain gene segments, and in adaptation to a new host species. Here we present a web-based tool that can be used for fast rotavirus genotype differentiation of all 11 group A rotavirus gene segments according to the new guidelines proposed by the Rotavirus Classification Working Group (RCWG). With the increasing sequencing efforts that are being conducted around the world to unravel complete rotavirus genomes of human and animal origin, this tool will be of great help to analyze and correctly classify the large amount of new data. The web-based tool is freely available at http://rotac.regatools.be .

Abstract A major limitation for better understanding the role of the human gut virome in health and disease is the lack of validated methods that allow high throughput virome analysis. To overcome this, we evaluated the quantitative effect of homogenisation, centrifugation, filtration, chloroform treatment and random amplification on a mock-virome (containing nine highly diverse viruses) and a bacterial mock-community (containing four faecal bacterial species) using quantitative PCR and next-generation sequencing. This resulted in an optimised protocol that was able to recover all viruses present in the mock-virome and strongly alters the ratio of viral versus bacterial and 16S rRNA genetic material in favour of viruses (from 43.2% to 96.7% viral reads and from 47.6% to 0.19% bacterial reads). Furthermore, our study indicated that most of the currently used virome protocols, using small filter pores and/or stringent centrifugation conditions may have largely overlooked large viruses present in viromes. We propose NetoVIR ( N ovel e nrichment t echnique o f VIR omes), which allows for a fast, reproducible and high throughput sample preparation for viral metagenomics studies, introducing minimal bias. This procedure is optimised mainly for faecal samples, but with appropriate concentration steps can also be used for other sample types with lower initial viral loads.