White-tailed deer ( Odocoileus virginianus ) are highly susceptible to infection by SARS-CoV-2, with multiple reports of widespread spillover of virus from humans to free-living deer. While the recently emerged SARS-CoV-2 B.1.1.529 Omicron variant of concern (VoC) has been shown to be notably more transmissible amongst humans, its ability to cause infection and spillover to non-human animals remains a challenge of concern. We found that 19 of the 131 (14.5%; 95% CI: 0.10-0.22) white-tailed deer opportunistically sampled on Staten Island, New York, between December 12, 2021, and January 31, 2022, were positive for SARS-CoV-2 specific serum antibodies using a surrogate virus neutralization assay, indicating prior exposure. The results also revealed strong evidence of age-dependence in antibody prevalence. A significantly (χ 2 , p < 0.001) greater proportion of yearling deer possessed neutralizing antibodies as compared with fawns (OR=12.7; 95% CI 4-37.5). Importantly, SARS-CoV-2 nucleic acid was detected in nasal swabs from seven of 68 (10.29%; 95% CI: 0.0-0.20) of the sampled deer, and whole-genome sequencing identified the SARS-CoV-2 Omicron VoC (B.1.1.529) is circulating amongst the white-tailed deer on Staten Island. Phylogenetic analyses revealed the deer Omicron sequences clustered closely with other, recently reported Omicron sequences recovered from infected humans in New York City and elsewhere, consistent with human to deer spillover. Interestingly, one individual deer was positive for viral RNA and had a high level of neutralizing antibodies, suggesting either rapid serological conversion during an ongoing infection or a "breakthrough" infection in a previously exposed animal. Together, our findings show that the SARS-CoV-2 B.1.1.529 Omicron VoC can infect white-tailed deer and highlights an urgent need for comprehensive surveillance of susceptible animal species to identify ecological transmission networks and better assess the potential risks of spillback to humans.These studies provide strong evidence of infection of free-living white-tailed deer with the SARS-CoV-2 B.1.1.529 Omicron variant of concern on Staten Island, New York, and highlight an urgent need for investigations on human-to-animal-to-human spillovers/spillbacks as well as on better defining the expanding host-range of SARS-CoV-2 in non-human animals and the environment.

The ongoing evolution of SARS-CoV-2 into more easily transmissible and infectious variants has sparked concern over the continued effectiveness of existing therapeutic antibodies and vaccines. Hence, together with increased genomic surveillance, methods to rapidly develop and assess effective interventions are critically needed. Here we report the discovery of SARS-CoV-2 neutralizing antibodies isolated from COVID-19 patients using a high-throughput platform. Antibodies were identified from unpaired donor B-cell and serum repertoires using yeast surface display, proteomics, and public light chain screening. Cryo-EM and functional characterization of the antibodies identified N3-1, an antibody that binds avidly (K

ABSTRACT The association of the receptor binding domain (RBD) of SARS-CoV-2 viral spike with human angiotensin converting enzyme (hACE2) represents the first required step for viral entry. Amino acid changes in the RBD have been implicated with increased infectivity and potential for immune evasion. Reliably predicting the effect of amino acid changes in the ability of the RBD to interact more strongly with the hACE2 receptor can help assess the public health implications and the potential for spillover and adaptation into other animals. Here, we introduce a two-step framework that first relies on 48 independent 4-ns molecular dynamics (MD) trajectories of RBD-hACE2 variants to collect binding energy terms decomposed into Coulombic, covalent, van der Waals, lipophilic, generalized Born electrostatic solvation, hydrogen-bonding, π-π packing and self-contact correction terms. The second step implements a neural network to classify and quantitatively predict binding affinity using the decomposed energy terms as descriptors. The computational base achieves an accuracy of 82.2% in terms of correctly classifying single amino-acid substitution variants of the RBD as worsening or improving binding affinity for hACE2 and a correlation coefficient r of 0.69 between predicted and experimentally calculated binding affinities. Both metrics are calculated using a 5-fold cross validation test. Our method thus sets up a framework for effectively screening binding affinity change with unknown single and multiple amino-acid changes. This can be a very valuable tool to predict host adaptation and zoonotic spillover of current and future SARS-CoV-2 variants.

Severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) surface spike glycoprotein - a major antibody target - is critical for virus entry via engagement of human angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) receptor. Despite successes with existing vaccines and therapies that primarily target the receptor binding domain (RBD) of the spike protein, the susceptibility of RBD to mutations provides escape routes for the SARS-CoV-2 from neutralizing antibodies. On the other hand, structural conservation in the spike protein can be targeted to reduce escape mutations and achieve broad protection. Here, we designed candidate stable immunogens that mimic surface features of selected conserved regions of spike protein through 'epitope grafting,' in which we present the target epitope topology on diverse heterologous scaffolds that can structurally accommodate the spike epitopes. Structural characterization of the epitope-scaffolds showed stark agreement with our computational models and target epitopes. The sera from mice immunized with engineered designs display epitope-scaffolds and spike binding activity. We also demonstrated the utility of the designed epitope-scaffolds in diagnostic applications. Taken all together, our study provides important methodology for targeting the conserved, non-RBD structural motifs of spike protein for SARS-CoV-2 epitope vaccine design and demonstrates the potential utility of 'epitope grafting' in rational vaccine design.

The cellular entry of severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) involves the association of its receptor binding domain (RBD) with human angiotensin converting enzyme 2 (hACE2) as the first crucial step. Efficient and reliable prediction of RBD-hACE2 binding affinity changes upon amino acid substitutions can be valuable for public health surveillance and monitoring potential spillover and adaptation into non-human species. Here, we introduce a convolutional neural network (CNN) model trained on protein sequence and structural features to predict experimental RBD-hACE2 binding affinities of 8,440 variants upon single and multiple amino acid substitutions in the RBD or ACE2. The model achieves a classification accuracy of 83.28% and a Pearson correlation coefficient of 0.85 between predicted and experimentally calculated binding affinities in five-fold cross-validation tests and predicts improved binding affinity for most circulating variants. We pro-actively used the CNN model to exhaustively screen for novel RBD variants with combinations of up to four single amino acid substitutions and suggested candidates with the highest improvements in RBD-ACE2 binding affinity for human and animal ACE2 receptors. We found that the binding affinity of RBD variants against animal ACE2s follows similar trends as those against human ACE2. White-tailed deer ACE2 binds to RBD almost as tightly as human ACE2 while cattle, pig, and chicken ACE2s bind weakly. The model allows testing whether adaptation of the virus for increased binding with other animals would cause concomitant increases in binding with hACE2 or decreased fitness due to adaptation to other hosts.

Abstract Coronavirus disease-2019 (COVID-19) caused by severe acute respiratory syndrome coronavirus-2 (SARS-CoV-2) continues to pose a significant threat to public health globally. Notably, SARS-CoV-2 demonstrates a unique capacity to infect various non-human animal species, documented in captive and free-living animals. However, experimental studies revealed low susceptibility of domestic cattle ( Bos taurus ) to ancestral B.1 lineage SARS-CoV-2 infection, with limited viral replication and seroconversion. Despite the emergence of viral variants with potentially altered host tropism, recent experimental findings indicate greater permissiveness of cattle to SARS-CoV-2 Delta variant infection compared to other variants, though with limited seroconversion and no clear evidence of transmission. While some studies detected SARS-CoV-2 antibodies in cattle in Italy and Germany, there is no evidence of natural SARS-CoV-2 infection in cattle from the United States or elsewhere. Since serological tests have inherent problems of false positives and negatives, we conducted a comprehensive assessment of multiple serological assays on over 600 cattle serum samples, including pre-pandemic and pandemic cattle sera. We found that SARS-CoV-2 pseudovirus neutralization assays with a luciferase reporter system can produce false positive results, and care must be taken to interpret serological diagnosis using these assays. We found no serological evidence of natural SARS-CoV-2 infection or transmission among cattle in the USA. Hence, it is critical to develop more reliable serological assays tailored to accurately detect SARS-CoV-2 antibodies in cattle populations and rigorously evaluate diagnostic tools. This study underscores the importance of robust evaluation when employing serological assays for SARS-CoV-2 detection in cattle populations.

ABSTRACT The optimal timeframe for donating convalescent plasma to be used for COVID-19 immunotherapy is unknown. To address this important knowledge deficit, we determined in vitro live-virus neutralizing capacity and persistence of IgM and IgG antibody responses against the receptor-binding domain and S1 ectodomain of the SARS-CoV-2 spike glycoprotein in 540 convalescent plasma samples obtained from 175 COVID-19 plasma donors for up to 142 days post-symptom onset. Robust IgM, IgG, and viral neutralization responses to SARS-CoV-2 persist, in the aggregate, for at least 100 days post-symptom onset. However, a notable acceleration in decline in virus neutralization titers ≥160, a value suitable for convalescent plasma therapy, was observed starting 60 days after first symptom onset. Together, these findings better define the optimal window for donating convalescent plasma useful for immunotherapy of COVID-19 patients and reveal important predictors of an ideal plasma donor, including age and COVID-19 disease severity score. One Sentence Summary Evaluation of SARS-CoV-2 anti-spike protein IgM, IgG, and live-virus neutralizing titer profiles reveals that the optimal window for donating convalescent plasma for use in immunotherapy is within the first 60 days of symptom onset.