Through an effort to develop novel ligands that have subtype selectivity for the estrogen receptors alpha (ERα) and beta (ERβ), we have found that 2,3-bis(4-hydroxyphenyl)propionitrile (DPN) acts as an agonist on both ER subtypes, but has a 70-fold higher relative binding affinity and 170-fold higher relative potency in transcription assays with ERβ than with ERα. To investigate the ERβ affinity- and potency-selective character of this DPN further, we prepared a series of DPN analogues in which both the ligand core and the aromatic rings were modified by the repositioning of phenolic hydroxy groups and by the addition of alkyl substituents and nitrile groups. We also prepared other series of DPN analogues in which the nitrile functionality was replaced with acetylene groups or polar functions, to mimic the linear geometry or polarity of the nitrile, respectively. To varying degrees, all of the analogues show preferential binding affinity for ERβ (i.e., they are ERβ affinity-selective), and many, but not all of them, are also more potent in activating transcription through ERβ than through ERα (i.e., they are ERβ potency-selective). meso-2,3-Bis(4-hydroxyphenyl)succinonitrile and dl-2,3-bis(4-hydroxyphenyl)succinonitrile are among the highest ERβ affinity-selective ligands, and they have an ERβ potency selectivity that is equivalent to that of DPN. The acetylene analogues have higher binding affinities but somewhat lower selectivities than their nitrile counterparts. The polar analogues have lower affinities, and only the fluorinated polar analogues have substantial affinity selectivities. This study suggests that, in this series of ligands, the nitrile functionality is critical to ERβ selectivity because it provides the optimal combination of linear geometry and polarity. Furthermore, the addition of a second nitrile group β to the nitrile in DPN or the addition of a methyl substitutent at an ortho position on the β-aromatic ring increases the affinity and selectivity of these compounds for ERβ. These ERβ-selective compounds may prove to be valuable tools in understanding the differences in structure and biological function of ERα and ERβ.

Tuberculosis remains a large global disease burden for which treatment regimens are protracted and monitoring of disease activity difficult. Existing detection methods rely almost exclusively on bacterial culture from sputum which limits sampling to organisms on the pulmonary surface. Advances in monitoring tuberculous lesions have utilized the common glucoside [18F]FDG, yet lack specificity to the causative pathogen Mycobacterium tuberculosis (Mtb) and so do not directly correlate with pathogen viability. Here we show that a close mimic that is also positron-emitting of the non-mammalian Mtb disaccharide trehalose - 2-[18F]fluoro-2-deoxytrehalose ([18F]FDT) - can act as a mechanism-based enzyme reporter in vivo. Use of [18F]FDT in the imaging of Mtb in diverse models of disease, including non-human primates, successfully co-opts Mtb-specific processing of trehalose to allow the specific imaging of TB-associated lesions and to monitor the effects of treatment. A pyrogen-free, direct enzyme-catalyzed process for its radiochemical synthesis allows the ready production of [18F]FDT from the most globally-abundant organic 18F-containing molecule, [18F]FDG. The full, pre-clinical validation of both production method and [18F]FDT now creates a new, bacterium-specific, clinical diagnostic candidate. We anticipate that this distributable technology to generate clinical-grade [18F]FDT directly from the widely-available clinical reagent [18F]FDG, without need for either bespoke radioisotope generation or specialist chemical methods and/or facilities, could now usher in global, democratized access to a TB-specific PET tracer.