SUMMARY Protein phosphatase 2A (PP2A) is a versatile enzyme affecting many aspects of cellular physiology. However, it remains unclear which of the cellular processes are most perturbed upon PP2A inhibition and how these perturbations could be exploited therapeutically. We report an unanticipated sensitivity of the splicing machinery to phosphorylation changes in response to PP2A inhibition by LB-100 in colorectal adenocarcinoma. We observe enrichment for differentially phosphorylated sites within cancer-critical splicing nodes of U2 snRNP, SRSF and hnRNP proteins. Altered phosphorylation endows LB-100-treated colorectal adenocarcinoma cells with differential splicing patterns. In PP2A-inhibited cells, over 1000 events of exon skipping and intron retention affect regulators of genomic integrity. Finally, LB-100-evoked alternative splicing is predicted to be a source of neoantigens that can improve cancer treatment responses to immune modulators. Our findings provide a potential explanation for the pre-clinical and clinical observations that PP2A inhibition sensitizes cancer cells to immune checkpoint blockade and genotoxic agents.

ABSTRACT Cancer homeostasis depends on a balance between activated oncogenic pathways driving tumorigenesis and engagement of stress-response programs that counteract the inherent toxicity of such aberrant signaling. While inhibition of oncogenic signaling pathways has been explored extensively, there is increasing evidence that overactivation of the same pathways can also disrupt cancer homeostasis and cause lethality. We show here that inhibition of Protein Phosphatase 2A (PP2A) hyperactivates multiple oncogenic pathways and engages stress responses in colon cancer cells. Genetic and compound screens identify combined inhibition of PP2A and WEE1 as synergistic in multiple cancer models by collapsing DNA replication and triggering premature mitosis followed by cell death. This combination also suppressed the growth of patient-derived tumors in vivo . Remarkably, acquired resistance to this drug combination suppressed the ability of colon cancer cells to form tumors in vivo . Our data suggest that paradoxical activation of oncogenic signaling can result in tumor suppressive resistance.

In malignant transformation, cellular stress response pathways are dynamically mobilized to counterbalance oncogenic activity, keeping cancer cells viable. Therapeutic disruption of this riskily balanced homeostasis might change the outcome of many human cancers, particularly those for which no effective therapy is available. Here, we report the use of Fibroblast Growth Factor 2 (FGF2) to demonstrate that further mitogenic activation disrupts cellular homeostasis and strongly sensitizes cancer cells to stress-targeted therapeutic inhibitors. We show that FGF2 enhanced replication and proteotoxic stresses in a K-Ras-driven murine cancer cell model, and combinations of FGF2 and proteasome or DNA damage response-checkpoint inhibitors triggered cell death. CRISPR/Cas9-mediated K-Ras depletion suppressed the malignant phenotype and prevented these synergic toxicities in these murine cells. Moreover, in a panel of human Ewing's sarcoma family tumor cells, sub-lethal concentrations of bortezomib (proteasome-inhibitor) or VE-821 (ATR-inhibitor) induced cell death when combined with FGF2. Sustained MAPK-ERK1/2 overactivation induced by FGF2 underlies these synthetic lethalities, once late pharmacological inhibition of this pathway restored cell homeostasis and prevented these described synergies. Our results highlight how mitotic signaling pathways frequently overridden in malignant transformation might be exploited to disrupt the risky robustness of cancer cells, ultimately sensitizing them to stress-targeted therapies. This approach provides a new therapeutic rationale for human cancers, with important implications for tumors still lacking effective treatment, and for those that frequently relapse after available therapies.