Abstract Early-life adversity (ELA) predisposes individuals to develop neuropsychiatric conditions, which are more prevalent in women than men. Efforts to model this sex difference in rodents have produced mixed results, with some studies paradoxically showing stronger phenotypes in males than females. Since changes in reproductive hormone levels can increase the likelihood of anxiety disorders in women, we examined the effects of ELA on adult female mice across the estrous cycle. We found that during diestrus, when the ratio of progesterone to estrogen is relatively high, ELA mice exhibit increased avoidance behavior, altered activity levels in specific contexts, and increased theta oscillation power in the ventral hippocampus. Ovariectomy, which eliminates circulating estrogen but not progesterone, unexpectedly preserved some of the effects present in diestrus ELA mice. Progesterone receptor antagonism in diestrus normalized avoidance behavior in ELA mice, while treatment with a negative allosteric modulator of the progesterone metabolite allopregnanolone promoted avoidance behavior in control mice. These results suggest that altered progesterone and allopregnanolone signaling during diestrus increases avoidance behavior in ELA mice

Hippocampal somatostatin-expressing (Sst) GABAergic interneurons (INs) exhibit considerable anatomical and functional heterogeneity. Recent single cell transcriptome analyses have provided a comprehensive Sst-IN subtype census, a plausible molecular ground truth of neuronal identity whose links to specific functionality remain incomplete. Here, we designed an approach to identify and access subpopulations of Sst-INs based on transcriptomic features. Four mouse models based on single or combinatorial Cre- and Flp- expression differentiated functionally distinct subpopulations of CA1 hippocampal Sst-INs that largely tiled the morpho-functional parameter space of the Sst-INs superfamily. Notably, the Sst;;Tac1 intersection revealed a population of bistratified INs that preferentially synapsed onto fast-spiking interneurons (FS-INs) and were both necessary and sufficient to interrupt their firing. In contrast, the Ndnf;;Nkx2-1 intersection identified a population of oriens lacunosum-moleculare (OLM) INs that predominantly targeted CA1 pyramidal neurons, avoiding FS-INs. Overall, our results provide a framework to translate neuronal transcriptomic identity into discrete functional subtypes that capture the diverse specializations of hippocampal Sst-INs.

Summary Neurons perform input-output operations that integrate synaptic inputs with intrinsic electrical properties, operations generally constrained by the brevity of synaptic events. Here we report that sustained firing of CA1 hippocampal fast-spiking parvalbumin-expressing interneurons (PV-INs) can be persistently interrupted for up to several hundred milliseconds following brief GABA A R-mediated inhibition in vitro and in vivo . A single presynaptic neuron could interrupt PV-INs firing, occasionally with a single action potential (AP), and reliably with AP bursts. Experiments and computational modeling revealed that the persistent interruption of firing maintains neurons in a depolarized, quiescent state through a cell-autonomous mechanism. Strikingly, interrupted PV-INs are highly responsive to Schaffer collateral inputs. The persistent interruption of firing provides a disinhibitory circuit mechanism favoring spike generation in CA1 pyramidal cells. Overall, our results demonstrate that neuronal silencing can far outlast brief synaptic inhibition owing to well-tuned interplay between neurotransmitter release and postsynaptic membrane dynamics, a phenomenon impacting microcircuit function.