ABSTRACT The dedifferentiation of somatic cells into a pluripotent state by cellular reprogramming coincides with a reversal of age-associated molecular hallmarks. Although transcription factor induced cellular reprogramming has been shown to ameliorate these aging phenotypes in human cells and extend health and lifespan in mice, translational applications of this approach are still limited. More recently, chemical reprogramming via small molecule cocktails have demonstrated a similar ability to induce pluripotency in vitro, however, its potential impact on aging is unknown. Here, we demonstrated that partial chemical reprogramming is able to improve key drivers of aging including genomic instability and epigenetic alterations in aged human cells. Moreover, we identified an optimized combination of two reprogramming molecules sufficient to induce the amelioration of additional aging phenotypes including cellular senescence and oxidative stress. Importantly, in vivo application of this two-chemical combination significantly extended C. elegans lifespan. Together, these data demonstrate that improvement of key drivers of aging and lifespan extension is possible via chemical induced partial reprogramming, opening a path towards future translational applications.

ABSTRACT Over the last decades, several premature aging mouse models have been developed to study aging and identify interventions that can delay age-related diseases. Yet, it is still unclear whether these models truly recapitulate natural aging. Here, we analyzed DNA methylation in multiple tissues of four previously reported mouse models of premature aging (ERCC1, LAKI, POLG and XPG). We estimated DNA methylation (DNAm) age of these samples using the Horvath clock. The most pronounced increase in DNAm age could be observed in ERCC1 mice, a strain which exhibits a deficit in DNA nucleotide excision repair. In line with these results, we detected an increase in epigenetic age in fibroblasts isolated from patients with progeroid syndromes associated with mutations in DNA excision repair genes. These findings highlight ERCC1 as a particularly attractive mouse model to study aging in mammals and suggest a strong connection between DNA damage and epigenetic dysregulation during aging.

Aging is the major risk factor for most human diseases and represents a major socio-economical challenge for modern societies. Despite its importance, the process of aging remains poorly understood. Epigenetic dysregulation has been proposed as a key driver of the aging process. Modifications in transcriptional networks and chromatin structure might be central to age-related functional decline. A prevalent feature described during aging is the overall reduction in heterochromatin, specifically marked by the loss of repressive histone modification, Histone 3 lysine 9 trimethylation (H3K9me3). However, the role of H3K9me3 in aging, especially in mammals, remains unclear. Here we show using a novel mouse strain (TKOc), carrying a triple knockout of three methyltransferases responsible for H3K9me3 deposition, that the inducible loss of H3K9me3 in adulthood results in premature aging. TKOc mice exhibit reduced lifespan, lower body weight, increased frailty index, multi-organ degeneration, transcriptional changes with significant upregulation of transposable elements, and accelerated epigenetic age. Our data strongly supports the concept that the loss of epigenetic information directly drives the aging process. These findings reveal the importance of epigenetic regulation in aging and suggest that interventions targeting epigenetic modifications could potentially slow down or reverse age-related decline. Understanding the molecular mechanisms underlying the process of aging will be crucial for developing novel therapeutic strategies that can delay the onset of age-associated diseases and preserve human health at old age specially in rapidly aging societies.

The nematode C. elegans has long served as a gold-standard model organism in aging research, particularly since the discovery of long-lived mutants in conserved aging pathways including daf-2 (IGF1) and age-1 (PI3K). Its short lifespan and small size make it highly suitable for high throughput experiments. While numerous molecules have been tested for their effects on C. elegans lifespan, consensus is still lacking regarding the most effective and reproducible compounds. Confounding effects, especially those related to drug-bacteria interactions, remain a contentious issue in the literature. In this study, we evaluated 16 of the most frequently reported lifespan-extending molecules in C. elegans, examining their effects on lifespan with two different diets (live and UV-killed OP50). In addition, we assessed the compounds' impact on bacterial growth, their effects on various nematode strains, and the impact of the starting age of treatment. Our findings first confirmed robust lifespan extension with many, but not all, of the 16 tested compounds from the literature, and revealed that some of them could be combined to get synergistic effects. Additionally, we showed that some of these compounds also extend lifespan in the fly D. melanogaster, demonstrating a conserved effect across species. Finally, by expanding our screen to a broader pool of molecules, we identified novel lifespan-extending compounds in C. elegans.