Neuropathic pain is a chronic debilitating disease that results from nerve damage, persists long after the injury has subsided, and is characterized by spontaneous pain and mechanical hypersensitivity. Although loss of inhibitory tone in the dorsal horn of the spinal cord is a major contributor to neuropathic pain, the molecular and cellular mechanisms underlying this disinhibition are unclear. Here, we combined pharmacogenetic activation and selective ablation approaches in mice to define the contribution of spinal cord parvalbumin (PV)-expressing inhibitory interneurons in naive and neuropathic pain conditions. Ablating PV neurons in naive mice produce neuropathic pain-like mechanical allodynia via disinhibition of PKCγ excitatory interneurons. Conversely, activating PV neurons in nerve-injured mice alleviates mechanical hypersensitivity. These findings indicate that PV interneurons are modality-specific filters that gate mechanical but not thermal inputs to the dorsal horn and that increasing PV interneuron activity can ameliorate the mechanical hypersensitivity that develops following nerve injury.

ABSTRACT Spinal cord stimulation (SCS) reduces chronic pain. Conventional (40-60 Hz) SCS engages spinal inhibitory mechanisms by activating low-threshold mechanoreceptive afferents with axons in the dorsal columns (DCs). But activating DC axons typically causes a buzzing sensation (paresthesia) that can be uncomfortable. Kilohertz-frequency (1-10 kHz) SCS produces analgesia without paresthesia and is thought, therefore, not to activate DC axons, leaving its mechanism unclear. Here we show in rats that kilohertz-frequency SCS activates DC axons but causes them to spike less synchronously than conventional SCS. Spikes desynchronize because axons entrain irregularly when stimulated at intervals shorter than their refractory period, a phenomenon we call overdrive desynchronization. Effects of overdrive desynchronization on evoked compound action potentials were verified in simulations, rats, pigs, and a chronic pain patient. Whereas synchronous spiking in DC axons is necessary for paresthesia, asynchronous spiking is sufficient to produce analgesia. Asynchronous activation of DC axons thus produces paresthesia-free analgesia.

Abstract The cholesteryl ester transfer protein (CETP) is a lipid transfer protein responsible for the exchange of cholesteryl esters and triglycerides between lipoproteins. Decreased CETP activity is associated with longevity, cardiovascular health, and maintenance of good cognitive performance. Interestingly, mice lack the CETP-encoding gene and have very low levels of low-density lipoprotein (LDL) particles compared to humans. To understand how CETP activity affects the brain, we utilised CETP transgenic (CETPtg) mice showing elevated LDL levels on a high cholesterol diet inducing CETP expression. We found that CETPtg mice had up to 25% higher cholesterol levels in the brain. Using a microarray on astrocyte-derived mRNA, we found that this cholesterol increase is likely not due to astrocytic-dependent de novo synthesis of cholesterol. Rather, several genes linked to Alzheimer’s disease were altered in CETPtg mice. Most interestingly, we found activation of the G-protein coupled receptor EP4 and γ-secretase as upstream regulators of these transcriptional changes. Further in vitro studies showed that CETP expression was sufficient to activate γ-secretase activity. The data suggest that CETP activity affects brain’s health through modulating cholesterol levels and Alzheimer’s-related pathways. Therefore, CETPtg mice constitute a valuable research tool to investigate the impact of the cholesterol metabolism on brain functions.

Mechanotransduction, the conversion of mechanical stimuli into electrical signals, is a fundamental process underlying several physiological functions such as touch and pain sensing, hearing and proprioception. This process is carried out by specialized mechanosensitive ion channels whose identities have been discovered for most functions except pain sensing. Here we report the identification of TACAN (Tmem120A), an essential subunit of the mechanosensitive ion channel responsible for sensing mechanical pain. TACAN is expressed in a subset of nociceptors, and its expression increases mechanically-evoked currents in cell lines. Mutagenesis of putative pore-lining residues or reconstitution of purified TACAN in synthetic lipids reveals that TACAN forms a functional ion channel. Finally, knocking down TACAN decreases the mechanosensitivity of nociceptors and reduces behavioral responses to mechanical but not thermal painful stimuli, without affecting the sensitivity to touch. We propose that TACAN is a pore-forming subunit of the mechanosensitive ion channel responsible for sensing mechanical pain.