ABSTRACT Pandemic SARS CoV-2 has been undergoing rapid evolution during spread throughout the world resulting in the emergence of many Spike protein variants, some of which appear to either evade antibody neutralization, transmit more efficiently, or potentially exhibit increased virulence. This raises significant concerns regarding the long-term efficacy of protection elicited after primary infection and/or from vaccines derived from single virus Spike (S) genotypes, as well as the efficacy of anti-S monoclonal antibody based therapeutics. Here, we used fully human polyclonal human IgG (SAB-185), derived from hyperimmunization of transchromosomic bovines with DNA plasmids encoding the SARS-CoV-2 Wa-1 strain S protein or purified ectodomain of S protein, to examine the neutralizing capacity of SAB-185 in vitro and the protective efficacy of passive SAB-185 antibody (Ab) transfer in vivo . The Ab preparation was tested for neutralization against five variant SARS-CoV-2 strains: Munich (Spike D614G), UK (B.1.1.7), Brazil (P.1) and SA (B.1.3.5) variants, and a variant isolated from a chronically infected immunocompromised patient (Spike Δ144-146). For the in vivo studies, we used a new human ACE2 (hACE2) transgenic Syrian hamster model that exhibits lethality after SARS-Cov-2 challenge and the Munich, UK, SA and Δ144-146 variants. SAB-185 neutralized each of the SARS-CoV-2 strains equivalently on Vero E6 cells, however, a control convalescent human serum sample was less effective at neutralizing the SA variant. In the hamster model, prophylactic SAB-185 treatment protected the hamsters from fatal disease and minimized clinical signs of infection. These results suggest that SAB-185 may be an effective treatment for patients infected with SARS CoV-2 variants.

SUMMARY Successful pregnancy in placental mammals substantially depends on the establishment of maternal immune tolerance to the semi-allogenic fetus. Disorders in this process are tightly associated with adverse pregnancy outcomes including recurrent spontaneous abortion (RSA). However, an in-depth understanding of the disorders from the aspect of systematic and decidual immune environment in RSA remains largely lacking. In this study, we utilized single-cell RNA-sequencing to comparably analyze the cellular and molecular signatures of decidual and peripheral leukocytes in normal and RSA pregnancies at the early stage of gestation. Integrative analysis identified 22 distinct cell clusters in total, and a dramatic difference in leukocyte subsets and molecular properties in RSA cases was revealed. Specifically, the cytotoxic properties of CD8T effector, NK, and MAIT cells in peripheral blood indicated apparently enhanced immune inflammatory status, and the subpopulation proportions and ligand-receptor interactions of the decidual leukocyte subsets demonstrated preferential immune activation in RSA patients. The molecular features, spatial distribution and the developmental trajectories of five decidual NK (dNK) subsets were illustrated. The proportion of a dNK subset responsible for fetal protection was reduced, while the ratio of another dNK subset with cytotoxic and immune-active signature was significantly increased. Notably, a unique pro-inflammatory CD56+CD16+ dNK subpopulation was substantially accumulated in RSA decidua. These findings reveal a comprehensive cellular and molecular atlas of decidual and peripheral leukocytes in human early pregnancy, which provides an in-depth insight into the immune pathogenesis for early pregnancy loss.