Activated M2 polarized macrophages are drivers of pulmonary fibrosis in several clinical scenarios such as Acute Respiratory Disease Syndrome (ARDS) and Idiopathic Pulmonary Fibrosis (IPF), through the production of inflammatory and fibrosis-inducing cytokines. In this study, we investigated the effect of targeting the CD206 receptor with a novel fragment of a Host Defense Peptide (HDP), RP-832c to decrease cytokines that cause fibrosis. RP-832c selectively binds to CD206 on M2 polarized bone marrow derived macrophages (BMDM) in vitro , resulting in a time-dependent decrease in CD206 expression, and a transient increase in M1 marker TNFα, which resolves over a 24hr period. To elucidate the antifibrotic effect of RP-832c, we used a murine model of bleomycin (BLM) -induced early-stage pulmonary fibrosis. RP-832c significantly reduced bleomycin-induced fibrosis in a dosage dependent manner, as well as decreased CD206, TGF-β1 and α-SMA expression in mouse lungs. Interestingly we did not observe any changes in the resident alveolar macrophage marker CD170 expression. Similarly, in an established model of lung fibrosis, RP-832c significantly decreased fibrosis in the lung, as well as significantly decreased inflammatory cytokines TNFα, IL-6, IL-10, INF-γ, CXCL1/2, and fibrosis markers TGF-β1 and MMP-13. In comparison with FDA approved drugs, Nintedanib and Pirfenidone, RP-832c exhibited a similar reduction in fibrosis compared to Pirfenidone, and to a greater extent than Nintedanib, with no apparent toxicities observed on body weight or blood chemistry. In summary, RP-832c is a potential agent to mitigate the overactivity of M2 macrophages in pathogenesis several pulmonary fibrotic diseases, including SARS-CoV-2 induced lung fibrosis.

Toll-like receptor (TLR)-dependent macrophage responses rely on acute increases in oxidative mitochondrial glucose metabolism that epigenetically support rapid proinflammatory transcriptional programming via histone acetylation. Subsequent suppression of oxidative metabolism restrains this metabolic-epigenetic support of proinflammatory gene transcription to enforce tolerance, an immunosuppressed state of innate immune memory. Identifying biology that promotes or counters these metabolic-epigenetic changes will inform therapeutic approaches to influence proinflammatory, antimicrobial, and immunosuppressed myeloid cellular states. Here, we demonstrate that Coenzyme A (CoA) is a ″ metabolic adjuvant ″, as supplying exogenous CoA to macrophages both enhances the magnitude of TLR-driven proinflammatory and antimicrobial responses, and reverse tolerance, via promotion of oxidative metabolism. Extracellular CoA, which we isotopically trace to show its direct uptake by macrophages, works synergistically with tonic TLR signaling, which we demonstrate is a critical regulator of nutrient uptake, metabolism, histone acetylation, and gene expression in macrophages. Together, TLR signaling and exogenous CoA promote mitochondrial glucose oxidation, acetyl-CoA production, and TLR target gene-specific histone acetylation, enhancing metabolic-epigenetic support of proinflammatory transcriptional programming. Exogenous CoA unlocks tumor-associated macrophage (TAM)-dependent TLR agonist anti-tumor activity in an in vivo breast cancer model, and promotes macrophage restriction of the intracellular bacterial pathogen Legionella pneumophila in vitro via an Irg1-dependent antimicrobial state of CoA-augmented itaconate biosynthesis. Our findings demonstrate direct acquisition of intact extracellular CoA, and the ability of this exogenously supplemented metabolic cofactor to augment a key oxidative metabolic-epigenetic pathway supporting proinflammatory and antimicrobial macrophage phenotypes. This may inform host-targeted metabolic adjuvant therapies to reverse myeloid immunosuppression.