MS
Mariana Santos
Author with expertise in Metabolic Reprogramming in Cancer Biology
Achievements
Cited Author
Open Access Advocate
Key Stats
Upvotes received:
0
Publications:
11
(73% Open Access)
Cited by:
255
h-index:
17
/
i10-index:
25
Reputation
Biology
< 1%
Chemistry
< 1%
Economics
< 1%
Show more
How is this calculated?
Publications
0

Diabetes causes marked inhibition of mitochondrial metabolism in pancreatic β-cells

Elizabeth Haythorne et al.Jun 6, 2019
Abstract Diabetes is a global health problem caused primarily by the inability of pancreatic β-cells to secrete adequate levels of insulin. The molecular mechanisms underlying the progressive failure of β-cells to respond to glucose in type-2 diabetes remain unresolved. Using a combination of transcriptomics and proteomics, we find significant dysregulation of major metabolic pathways in islets of diabetic βV59M mice, a non-obese, eulipidaemic diabetes model. Multiple genes/proteins involved in glycolysis/gluconeogenesis are upregulated, whereas those involved in oxidative phosphorylation are downregulated. In isolated islets, glucose-induced increases in NADH and ATP are impaired and both oxidative and glycolytic glucose metabolism are reduced. INS-1 β-cells cultured chronically at high glucose show similar changes in protein expression and reduced glucose-stimulated oxygen consumption: targeted metabolomics reveals impaired metabolism. These data indicate hyperglycaemia induces metabolic changes in β-cells that markedly reduce mitochondrial metabolism and ATP synthesis. We propose this underlies the progressive failure of β-cells in diabetes.
77

Lysosomal damage drives mitochondrial proteome remodelling and reprograms macrophage immunometabolism

Claudio Bussi et al.Aug 9, 2022
Summary Transient lysosomal damage after infection with cytosolic pathogens or silica crystals uptake results in protease leakage. Whether limited leakage of lysosomal contents into the cytosol affects the function of cytoplasmic organelles is unknown. Here, we show that sterile and non-sterile lysosomal damage triggers a cell death independent proteolytic remodelling of the mitochondrial proteome in macrophages. Mitochondrial metabolic reprogramming required lysosomal leakage of Cathepsin B and Cathepsin L and was independent of proteasome degradation and mitophagy. In a mouse model of endomembrane damage, metabolic analysis confirmed that in vivo, live lung macrophages that internalised crystals displayed impaired mitochondrial function and increased glycolytic and lipid metabolism. Single-cell RNA-sequencing analysis of bronchoalveolar lavage revealed that lysosomal damage skewed metabolic and immune responses primarily in CD36 + /LIPA + and Krt79 + /Car4 + subsets of alveolar macrophages. Importantly, modulation of macrophage metabolism with 2-Deoxy- d- glucose and oxamate impacted the host response to Mycobacterium tuberculosis (Mtb) infection in an endomembrane damage dependent manner. This work uncovers a new inter-organelle communication pathway, providing a general mechanism by which macrophages undergo mitochondrial metabolic reprograming after endomembrane damage.
1

Novel MOG analogues to explore the MCT2 pharmacophore, α-ketoglutarate biology and cellular effects of N-oxalylglycine

Louise Fets et al.Mar 15, 2021
ABSTRACT α-ketoglutarate (αKG) is a central metabolic node with a broad influence on cellular physiology. The αKG analogue N -oxalylglycine (NOG) and its membrane-permeable pro-drug derivative dimethyl-oxalylglycine (DMOG) have been extensively used as tools to study prolyl hydroxylases (PHDs) and other αKG-dependent processes. In cell culture media, DMOG is rapidly converted to MOG, which enters cells through monocarboxylate transporter MCT2, leading to intracellular NOG concentrations that are sufficiently high to inhibit glutaminolysis enzymes and cause cytotoxicity. Therefore, the degree of (D)MOG instability together with MCT2 expression levels determine the intracellular targets NOG engages with and, ultimately, its effects on cell viability. Here we designed and characterised a series of MOG analogues with the aims of improving stability and exploring the functional requirements for interaction with MCT2, a relatively understudied member of the SLC16 family. We report MOG analogues that maintain ability to enter cells via MCT2, and identify compounds that do not inhibit glutaminolysis or cause cytotoxicity but can still inhibit PHDs. We use these analogues to show that glutaminolysis-induced activation of mTORC1 can be uncoupled from PHD activity. Therefore, these new compounds can help deconvolute cellular effects that result from the polypharmacological action of NOG.
1

Metabolic turnover and dynamics of modified ribonucleosides by 13C labeling

Paulo Gameiro et al.Jul 20, 2021
Abstract Tandem mass spectrometry (MS/MS) is an accurate tool to assess modified ribonucleosides and their dynamics in mammalian cells. Yet, MS/MS quantification of lowly abundant modifications in non-ribosomal RNAs is unreliable, and the dynamic features of various modifications poorly understood. We developed a 13 C labeling approach, 13 C-dynamods, to quantify the turnover of base modifications in newly transcribed RNA. This turnover-based approach helped to resolve mRNA from ncRNA modifications in purified RNA or free ribonucleosides, and showed the distinct kinetics of N 6-methyladenosine (m 6 2 A) versus 7-methylguanosine (m 7 G) in polyA+-purified RNA. We uncovered that N 6, N 6-dimethyladenosine (m 6 2 A) exhibits a distinct turnover in small RNAs and free ribonucleosides when compared to the known m 6 A-modified large rRNAs. Finally, combined measurements of turnover and abundance informed on the transcriptional versus posttranscriptional sensitivity of modified ncRNAs and mRNAs, respectively, to stress conditions. Thus, 13 C-dynamods enables studies of origin of modified RNAs at steady-state and their dynamics under non-stationary conditions.
Load More